ИНСТРУКЦИЯ. по забору, транспортировке и хранению. биологического материала. Журнал забора патогенного биологического материала

Правила забора биологического материала

 Решение о необходимости  исследовать ту или иную локализацию (влагалище, уретра, цервикальный канал и др.) для анализа принимает лечащий врач на основании совокупности жалоб пациентки (та) и клинической картины заболевания.Для получения  объективного результата необходимо, чтобы  исследуемый клинический  материал содержал возможно большее количество  эпителиальных клеток и минимальное  количество слизи и примеси  крови  (допустимо умеренное присутствие примесей в виде крови и слизи). Неправильное взятие биоматериала может  привести к невозможности получения  достоверного результата и, вследствие этого , необходимости повторного взятия  биоматериала.

Порядок взятия клинического материала в пробирку с транспортной средой:

1. Открыть  крышку пробирки.

2. С помощью  одноразового стерильного зонда получить  отделяемое соответствующего

биотопа  (влагалище, уретра, цервикальный канал).

3.Перенести  зонд с клиническим материалом  в пробирку с  транспортной средой  объемом 1,5 мл, когда зонд упрется в дно пробирки, дополнительным усилием согнуть тонкую часть зонда до насечки, затем отломить и оставить зонд в пробирке .При необходимости получения клинического  материала из нескольких биотопов повторить процедуру,  каждый раз забирая клинический материал новым  зондом в новую пробирку.

3. Пробирку плотно  закрыть крышкой, промаркировать.

Особенности взятия клинического материала цервикального  канала:

1.Клинический материал цервикального канала получают  после введения во влагалище гинекологического  зеркала с помощью  уретрального зонда или цервикальной цитощетки  (для исследования на ВПЧ необходимо достаточное количество эпителиальных клеток!).

2.Перед взятием клинического материала необходимо  тщательно обработать отверстие цервикального  канала с помощью стерильного  марлевого тампона и затем  обработать шейку  матки стерильным физиологическим раствором.

3.После введения уретрального зонда в  шеечный канал на 1,5 см  его вращают несколько раз (2-3 полных оборота по часовой стрелке) и извлекают . При извлечении  зонда необходимо  полностью исключить  его касание стенок  влагалища.

4. Полученный  клинический материал помещается в  пробирку с транспортной  средой (см. выше).

Особенности взятия клинического материала из влагалища:

В день обследования  женщины не должны проводить  туалет половых органов и  спринцевание влагалища.

1. Клинический  материал из влагалища получают  с заднего или  боковых сводов с помощью  вагинального или уретрального зонда  путем соскоба с поверхности эпителия.

2. Клинический  материал должен быть  получен ДО проведения  мануального исследования.

3. Перед  манипуляцией гинекологическое зеркало можно  смочить теплой водой, применение  антисептиков для обработки зеркала  противопоказано.

4. У девочек  (virgo) клинический материал получают  со слизистой оболочки  преддверия влагалища  без использования гинекологического зеркала.

5. Полученный клинический материал помещается  в пробирку с транспортной  средой (см. выше).

Особенности взятия клинического материала из уретры у женщин:

1. Клинический  материал из уретры  получают с помощью уретрального  зонда.

2.Перед взятием клинического материала  пациентке рекомендуется воздержаться от мочеиспускания  в течение 1,5-2  часов.

3. При  наличии свободных уретральных выделений наружное отверстие уретры следует очистить  с помощью ватного тампона.

4. При отсутствии  свободных выделений может быть  проведен легкий массаж уретры.

5. После  введения инструмента в уретру  на глубину 1 см  необходимо продвигать его к наружному  отверстию, слегка нажимая на заднюю  и боковые стенки уретры (вращательные  движения болезненны).

6. Полученный  клинический материал помещается в  пробирку с транспортной средой(см. выше).

Для исследования материала ,полученного из нескольких биотопов, процедуру повторяют, каждый раз используя новый стерильный зонд и новую пробирку!!!

Недопустимо смешивать материал из   цервикального канала, влагалищного содержимого и уретры  в одной пробирке!

 Особенности взятия клинического материала из уретры у мужчин:

Перед взятием биоматериала пациенту рекомендуется воздержаться     от     мочеиспускания     в     течение

1,5–2 часов. Для исключения искажений результатов определения состава микрофлоры урогенитального тракта мужчин из-за присутствия в урогенитальном тракте транзиторной микрофлоры в течение трёх дней перед взятием биоматериала рекомендуется половое воздержание или использование защищенного полового контакта.

1.Перед взятием соскоба из уретры обрабатывают головку полового члена в области наружного отверстия уретры тампоном, смоченным стерильным физиологическим раствором.

2.Производят массаж уретры. При наличии свободно стекающих из уретры выделений удаляют их сухим тампоном.

3.Вводят зонд в уретру на глубину 1-2 см. Несколькими вращательными движениями производят соскоб эпителиальных клеток и переносят зонд в пробирку с транспортной средой, обламывают и оставляют. Отделяемое забирают в достаточном количестве. Допустимо умеренное присутствие примесей в виде слизи, крови и гноя.

Взятия клинического материала с крайней плоти головки полового члена (ГПЧ):

Перед взятием биоматериала пациенту рекомендуется воздержаться     от     мочеиспускания     в     течение

1,5–2 часов.

1.С помощью одноразового зонда делают  соскоб эпителиальных клеток из соответствующего биотопа (крайняя плоть головки полового члена, препуциальный мешок)  и переносят зонд в пробирку с транспортной средой, обламывают и оставляют.

Условия хранения и транспортировки биоматериала:

1. Пробирки с полученным клиническим материалом должны быть промаркированы.

2. В сопроводительном документе-направлении необходимо указать: ФИО, возраст пациентки (та), клинический материал, предполагаемый диагноз, показания  к обследованию, дату и время взятия пробы, наименование учреждения (подразделения), направляющего клинический материал.

3. Если время транспортировки клинического материала от момента взятия до момента его доставки в лабораторию не более суток, то пробирку с клиническим материалом необходимо хранить и доставлять в лабораторию при температуре бытового холодильника (+ 4+10°С), не замораживая.

4. В случае невозможности доставки клинического образца в лабораторию в течение суток, допускается однократное замораживание и хранение образца клинического материала при температуре  -20°С до одного месяца.

niigene.chitgma.ru

Санитарные правила СП 1.2.036-95 Порядок учета, хранения,...

Действующий

Настоящие правила подготовлены в соответствии с "Положением о Государственном санитарно-эпидемиологическом нормировании", утвержденным постановлением Правительства Российской Федерации от 05.06.94 N 625, и устанавливают требования к порядку учета, хранения, передачи и транспортирования микроорганизмов I-IV групп патогенности (далее - патогенные биологические агенты - ПБА *(1) I-IV групп). (Приложение 5.4.)

Требования правил обязательны для выполнения всеми организациями на территории России независимо от их ведомственной принадлежности и форм собственности, а также юридическими и физическими лицами, проводящими работы с использованием ПБА I-IV групп.

Правила устанавливают единый порядок учета, хранения, передачи ПБА и направлены на обеспечение личной и общественной безопасности при их транспортировании, а также исключение несанкционированной передачи и безучетного хранения.

В настоящих правилах использованы ссылки на следующие нормативные документы.

2.1. Закон РСФСР "О санитарно-эпидемиологическом благополучии населения". Ведомости Верховного Совета РСФСР. 1991. N 20. С. 641. 2.2. Распоряжение Президента Российской Федерации "О контроле за экспортом из Российской Федерации возбудителей заболеваний (патогенов) человека, животных и растений, их генетически измененных форм, фрагментов генетического материала и оборудования, которые могут быть применены при создании бактериологического (биологического) и токсинного оружия" от 14 июня 1994 года N 298-рп.

2.3. Постановление Правительства Российской Федерации "Положение о порядке контроля за экспортом из Российской Федерации возбудителей заболеваний (патогенов) человека, животных и растений, их генетически измененных форм, фрагментов генетического материала и оборудования, которые могут быть применены при создании бактериологического (биологического) и токсинного оружия" от 26 сентября 1994 г., N 1098.

2.4. Санитарные правила по безопасности работ с микроорганизмами. Ч.1. Порядок выдачи разрешения на работу с микроорганизмами I-IV групп патогенности и рекомбинантными молекулами ДНК. СП 1.2.006-93. Госкомсанэпиднадзор России, Москва, 1993.

2.5. Санитарные правила "Безопасность работы с микроорганизмами I-II групп патогенности". СП 1.2.011 - 94. Госкомсанэпиднадзор России, Москва, 1994.

2.6. "Правила устройства, техники безопасности, производственной санитарии, противоэпидемического режима и личной гигиены при работе в лабораториях (отделениях, отделах) санитарно-эпидемиологических учреждений системы Министерства здравоохранения СССР" от 20 октября 1981 г. МЗ СССР, Москва, 1981.

2.7. Правила техники безопасности, производственной санитарии и санитарно-противоэпидемического режима для предприятий по производству бактерийных и вирусных препаратов" от 30 августа 1979 г. МЗ СССР, Москва, 1980.

3.1.1. Работу с ПБА I-IV групп проводят только в организациях, имеющих разрешение на право работы с ними, выданные соответствии с Санитарными правилами - СП 1.2.006-93.

3.1.2. Работа с ПБА I-II групп должна проводиться в соответствии с Санитарными правилами - СП 1.2.011-94.

3.1.3. Работа с ПБА III-IV групп должна проводиться в соответствии с "Правилами устройства, техники безопасности, производственной санитарии, противоэпидемического режима и личной гигиены при работе в лабораториях (отделениях, отделах) санитарно-эпидемиологических учреждений системы Министерства здравоохранения СССР", действующими на территории Российской Федерации.

3.1.4. Работа предприятий по производству бактерийных и вирусных препаратов определяется "Правилами техники безопасности, производственной санитарии и санитарно-противоэпидемического режима для предприятий по производству бактерийных и вирусных препаратов".

3.1.5. В подразделениях, изготовляющих вакцины, обслуживающих водопроводы, пищевые предприятия, а также предприятия, производящие продукцию медицинского назначения (антибиотики, лекарственные, косметические средства и другие коммерческие препараты), запрещается иметь ПБА I-IV групп и проводить микробиологические (бактериологические, вирусологические, микологические и др.) исследования, связанные с изучением первично выделенных культур, подозрительных на наличие возбудителей I-IV групп.

3.1.6. Производственным подразделениям предприятий, контролирующим готовую продукцию, разрешается иметь только коллекцию типовых культур, предусмотренных нормативно-технической документацией.

3.1.7. ПБА I-IV групп, выделенные при диагностических и иных исследованиях в лабораториях, не имеющих права на работу с ними, должны быть переданы в специализированные организации, определяемые соответствующими министерствами и ведомствами.

3.1.8. В организациях, систематически работающих с ПБА I-IV групп, разрешается иметь коллекции типовых, авторских и депонированных штаммов для научной работы, производства и диагностических целей.

3.1.9. Для централизованного учета, хранения и депонирования штаммов микроорганизмов, имеющихся в организациях на территории России, министерства и ведомства определяют научно-исследовательские институты, на базе которых организуются специализированные коллекции с информационными функциями. (Отдельные специализированные коллекции перечислены в приложении 5.5.).

3.1.10. О выделении всех ПБА I-II групп и атипичных ПБА III-IV групп необходимо информировать соответствующие специализированные коллекции и по согласованию с их руководителями передавать эти ПБА в коллекции.

ПБА I-II групп, не подлежащие передаче в коллекции, уничтожают по распоряжению руководителя организации, а ПБА III-IV групп - руководителя подразделения.

3.1.11. Варианты ПБА, полученные в ходе выполнения научно-исследовательских работ, хранят в специализированных коллекциях как охраноспособные (объект патентования) или авторские (имеющие научное значение).

3.1.12. Производственные и эталонные ПБА I-IV групп разрешается получать только в специализированных коллекциях.

3.1.13. Ответственным за правильное хранение коллекционных ПБА является лицо, определяемое руководителем организации.

3.2.1. Подразделения, проводящие диагностические исследования по выделению ПБА I-IV групп или работающие с ними, должны вести учет движения и хранения ПБА по следующим формам*(2) (далее ф.): ф. N 512/у - журнал регистрации патогенных биологическик агентов, поступивших для исследования (идентификации) и хранения; ф. N 513/у - журнал учета выделенных штаммов микроорганизмов; ф. N 514/у (514а/у) - журнал учета движения патогенных биологических агентов; ф. N 518/у - журнал учета ПБА, находящихся в рабочей коллекции; ф. N 520/у - журнал обеззараживания патогенных биологических агентов.

3.2.2. Все коллекции должны вести учет ПБА I-IV групп по следующим формам:

ф. N 512/у - журнал регистрации патогенных биологических агентов, поступивших для исследования (идентификации) и хранения;

ф. N 514/у (514а/у) - журнал учета движения патогенных биологических агентов;

ф. N 515/у - инвентарный журнал коллекционных патогенных биологических агентов; ф. N 516/у - журнал выдачи патогенных биологических агентов; ф. N 517/у - карта индивидуального учета коллекционного патогенного биологического агента N;

ф. N 518/у - журнал учета ПБА, находящихся в рабочей коллекции;

ф. N 519/у - журнал лиофилизации патогенных биологических агентов;

ф. N 520/у - журнал обеззараживания патогенных биологических агентов.

Движение коллекционных ПБА I-IV групп регистрируют в ф. N 514/у (514а/у): для I-II групп - по каждому виду отдельно, а III-IV - суммарно по роду.

3.2.3. Штаммы, используемые для диагностических целей, а также вакцинные и производственные учитывают как коллекционные.

dokipedia.ru

ИНСТРУКЦИЯ. по забору, транспортировке и хранению. биологического материала

Транскрипт

1 ИНСТРУКЦИЯ по забору, транспортировке и хранению биологического материала 1

2 Содержание Введение 3 Забор, хранение и транспортировка биологического материала для выполнения общеклинических исследований Забор, хранение и транспортировка крови для определения группы крови и резусфактора 4 4 Забор, хранение и транспортировка крови для биохимических исследований 5 Забор, хранение и транспортировка крови для определения гликозилированного гемоглобина Забор, хранение и транспортировка крови для исследования свертывающей системы крови и МНО Забор, хранение и транспортировка крови для лабораторных исследований методом иммуноферментного (ИФА) и иммунохемилюминисцентного (ИХЛ) анализов Забор, хранение и транспортировка крови с целью проведения иммунологического исследования методом люминисцентной и проточной цитометрии Забор, хранение и транспортировка биологического материала для лабораторных исследований методом полимеразной цепной реакции (ПЦР) Забор, хранение и транспортировка биологического материала для бактериологических исследований

3 Введение Для получения достоверных результатов любого из существующих на сегодняшний день лабораторных исследований необходимо учитывать ряд факторов, оказывающих влияние на его результаты. К этим факторам относятся: 1. Состояние пациента, предшествующее взятию биологического материала для исследования. Все факторы, входящие в эту группу можно разделить на две категории: - факторы, которые должны быть указаны при любом виде лабораторного исследования пол, возраст, диагноз - факторы, которые указываются при некоторых видах лабораторных исследований национальность, физиологическое состояние (беременность, наличие сопутствующих заболеваний, фаза менструального цикла), прием лекарственных препаратов, прием пищи, голодание, курение, прием алкоголя. 2. Свойства биологического материала. 3. Условия взятия, времени хранения и транспортировки биологического материала. Ко второй и третьей группе факторов относятся стабильность анализируемого биологического материала и его возможный метаболизм in vitro. От этого зависит необходимость использования специальных контейнеров с консервантами и транспортных сред для временного хранения, а также условия транспортировки биологического материала в лаборатория (соблюдение температурного режима и влажности). Так, наиболее простой и в то же время эффективной мерой служит соблюдение единого правила взятия крови натощак, утром в положении пациента лежа или сидя. Существенную помощь в этом может оказать применение вакуумной системы забора крови. При использовании такой системы сокращается время взятия крови за счет ее ускоренного принужденного поступления в вакуумную пробирку, где кровь сразу контактирует с необходимым для сохранения аналита консервантом. При использовании метода полимеразной цепной реакции (ПЦР) взятие биологического материала производится только одноразовым инструментом в пробирки одноразового использования с транспортной средой. Нарушение правил забора биологического материала чревато нежелательными последствиями экономического (излишняя трата расходных материалов) и медицинского характера (повторное взятие биологического материала у пациента, задержка результатов исследования, возможность медицинских ошибок). Общими требованиями к взятию и транспортировке биологического материала являются: 1. Соблюдение сроков для взятия материала на исследование 2. Забор биологического материала должен осуществляться с учетом места максимальной локализации возбудителя и возможных путей его выделения в окружающую среду. 3. Биологический материал для исследования должен быть взят в достаточном объеме, в условиях исключающих контаминацию. 4. Взятие биологического материала должно производиться строго до начала приема антибактериальных и химиотерапевтических препаратов или не ранее, чем через дней после их отмены. 5. Отобранный биологический материал должен быть промаркерован. В сопроводительном документе-направлении необходимо указать пол, фамилию, имя, отчество, полную дату рождения, предполагаемый диагноз или показания к обследованию, дату взятия пробы, учреждение, направляющее материал, фамилию врача. При необходимости указывается дополнительная информация. 3

4 6. Контейнеры для транспортировки материала должны обеспечивать герметичность, стерильность, целостность образцов, а также исключать при открытии образование аэрозоля. 7. Материал доставляется в лабораторию с учетом правил транспортировки для различных видов исследований и лицами, получившими специальный инструктаж. При направлении материала на исследование необходимо исключить вероятность контаминации собранного биологического материала. Забор, хранение и транспортировка биологического материала для выполнения общеклинических исследований Забор крови производится в утренние часы натощак из локтевой вены в одноразовую стерильную вакуумную пробирку с К3 ЭДТА (пробирка с сиреневой крышкой) или с гепарином (пробирка с зеленой крышкой). Пробирку плавным движением переворачивают 2-3 раза для перемешивания крови с антикоагулянтом. Кровь может храниться в течение 2-3 часов с момента ее забора. При траспортировке температура крови должна быть о С Моча: Для общего анализа мочи пациент собирает утреннюю порцию в чистую сухую емкость после предварительного тщательного туалета наружных половых органов. Затем мл мочи отливается в специальный одноразовый контейнер и доставляется в лабораторию. Для исследования мочи по Нечепоренко собирается средняя порция утренней мочи, т.е. небольшое количество мочи в начале и в конце мочеиспускания выпускаются в унитаз. Для исследования на бактериурию утренняя порция мочи собирается в стерильный контейнер или забирается в условиях медицинского учреждения катетером. Моча может хранится в течение 2-3 часов с момента забора при температуре о С. При более длительном хранении (до 1 суток) температура хранения должна составлять +4 о С. Мочу необходимо доставить в лабораторию не позднее 2-3 часов с момента ее забора. осуществляется при температуре о С. Забор, хранение и транспортировка крови для определения группы крови и резусфактора Забор крови производится из локтевой вены в одноразовую стерильную вакуумную пробирку с активатором образования сгустка (пробирка с красной крышкой) или в сухую пробирку в объеме 5 мл. Кровь может хранится в пробирке с вакуумной системой в течении 24 часов при температуре о С, в сухой пробирке в течение 24 часов при температуре о С. Кровь необходимо доставить в лабораторию в течение 24 часов с момента ее забора. 4

5 Забор, хранение и транспортировка крови для биохимических исследований (за искл. гликозилированного гемоглобина, МНО, свертывающей системы крови) Забор крови производится в утренние часы натощак из локтевой вены в одноразовую стерильную вакуумную пробирку с активатором образования сгустка (пробирка с красной крышкой) в объеме 5 мл. При температуре о С. до суток, при температуре -20 о С до месяца Допускается только однократное замораживание материала В специальном контейнере: кровь при температуре о С, сыворотку при температуре о С. Забор, хранение и транспортировка крови для определения гликозилированного гемоглобина Забор крови производится в утренние часы натощак из локтевой вены в одноразовую стерильную вакуумную пробирку с К3 ЭДТА (пробирка с сиреневой крышкой) или гепарином (зеленая крышка). Кровь может хранится в течение 2-3 часов с момента забора при температуре о С. Кровь необходимо доставить в лабораторию не позднее 2-3 часов с момента ее забора. осуществляется при температуре о С. Забор, хранение и транспортировка крови для исследований свертывающей системы крови и МНО Забор крови производится в утренние часы натощак из локтевой вены в одноразовую стерильную вакуумную пробирку с 3,8% цитратом натрия (пробирка с голубой крышкой). Пробирку переворачивают 2-3 раза плавными движениями для перемешивания крови с антикоагулянтом. Кровь может хранится в течение 3 часов с момента забора при температуре о С. Кровь необходимо доставить в лабораторию не позднее 3 часов с момента ее забора. осуществляется при температуре о С. Забор, хранение и транспортировка крови для лабораторных исследований методом иммуноферментного (ИФА) и иммунохемилюминисцентного (ИХЛ) анализов Забор крови производится в утренние часы натощак из локтевой вены в одноразовую стерильную вакуумную пробирку с активатором образования сгустка (пробирка с красной крышкой) в объеме 5 мл. 5

6 При температуре о С. до суток, при температуре -20 о С до 1 месяца Допускается только однократное замораживание материала В специальном контейнере: кровь при температуре о С, сыворотку при температуре о С. Забор, хранение и транспортировка крови c целью проведения иммунологического исследования методом люминесценции и проточной цитометрии При проведении иммунологического исследования методом люминесценции забор крови производится в утренние часы натощак из локтевой вены в две одноразовых стерильных пробирки: первая пробирка с активатором образования сгустка (пробирка с красной крышкой), вторая пробирка с гепарином (пробирка с зеленой крышкой) специальной вакуумной системой в объеме 5 мл. ПРри проведении исследования методом проточной цитометрии забор крови производится аналогично забору крови для исследования методом люминесценции и дополнительно забирается кровь в третью пробирку с К3 ЭДТА (пробирка с сиреневой крышкой) вакуумной системы в объеме 4 мл. Кровь может хранится в течении 3 часов при температуре о С. Кровь необходимо доставить в лабораторию не позднее 3 часов с момента ее забора. При транспортировке температура крови должна быть о С. Забор, хранение и транспортировка биологического материала для лабораторных исследований методом полимеразной цепной реакции (ПЦР) При заборе и транспортировке биологического материала для ПЦРдиагностики необходимо соблюдать следующие правила: 1. Осуществлять забор биологического материала строго следуя инструкции, только стерильными одноразовыми инструментами в стерильные одноразовые флаконы, пробирки, контейнеры. Работать в одноразовых перчатках. 2. Забор клинического материала должен производиться в пробирки с транспортной средой, предоставляемой фирмой производителем тест-систем (в случаи, где использование транспортной среды является необходимым) Недопустимо использование транспортной среды других фирм-производителей. 3. При заборе биологического материала из урогенитального тракта не допускать попадания слизи и крови в пробу, так как это снижает эффективность выделения РНК и ДНК 4. Сразу после забора биологического материала плотно закрывать флакон (пробирки) с пробами, не касаясь их внутренней поверхности и внутренней поверхности крышек. 5. Строго соблюдать правила хранения и транспортировки клинических проб. Забор крови производится натощак из локтевой вены в специальную вакуумную пробирку с К2 или К3 ЭДТА. Хранение материала 6

7 При температуре о С не более 6 часов с момента взятия крови, при температуре о С в течение суток. Недопустимо замораживание образцов цельной крови. температуре о С в течении 6 часов. Соскоб эпителиальных клеток из урогенитального тракта: Соскоб из урогенитального тракта женщин Мазок (соскоб) производится из трех различных локализаций: цервикальный канал, уретра, задний свод влагалища. При необходимости материал для исследования берется из генитальных язв (Исследование на HSV I/II, Haemophilus ducrei, Treponema pallidum). Забор мазка производится одноразовым стерильным тампоном или цитощеткой. Удалив слизь с поверхности шейки матки тампоном ввести зонд в цервикальный канал на 1-1,5 см, вращая его в течении 3-5 секунд. Извлекают зонд, избегая касания стенок влагалища, и помещают его в стерильную пробирку с транспортной средой. Погрузив рабочую часть тампона в транспортную среду, вращают зонд секунд, вынимают зонд из раствора, прижимая его к стенке пробирки, и отжав избыток жидкости удаляют зонд и пробирку плотно закрывают. Перед забором мазка из уретры необходимо обработать ее наружное отверстие тампоном, смоченным стерильным физраствором, и произвести массаж уретры о лобковое сочленение. Ввести зонд в уретру на глубину 1-1,5 см, вращая его 3-5 секунд. Извлекают зонд и помещают его в пробирку с транспортной средой. Погрузив рабочую часть тампона в транспортную среду, вращают зонд секунд, вынимают зонд из раствора, прижимая его к стенке пробирки, и отжав избыток жидкости удаляют зонд и пробирку плотно закрывают. Соскоб эпителиальных клеток из уретры мужчин Перед забором мазка из уретры необходимо обработать головку полового члена в области наружного отверстия уретры тампоном, смоченным стерильным физраствором. Производят массаж уретры. При наличии свободно стекающих из уретры выделений удаляют их сухим тампоном. Одноразовый зонд вводят на глубину 3-4 см, вращая его в течении 3-5 секунд. Извлекают зонд и помещают его в пробирку с транспортной средой. Погрузив рабочую часть тампона в транспортную среду, вращают зонд секунд, вынимают зонд из раствора, прижимая его к стенке пробирки, и отжав избыток жидкости удаляют зонд и пробирку плотно закрывают. При комнатной температуре не более 6 часов, при температуре 2-8 о С не более недели. Допускается только однократное замораживание материала. Мазки из ротоглотки Мазки берут стерильным ватным тампоном вращательными движениями с поверхности миндалин, небных дужек и задней стенки ротоглотки. Извлекают зонд и помещают его в пробирку с транспортной средой. Погрузив рабочую часть тампона в транспортную среду, вращают зонд секунд, вынимают зонд из раствора, прижимая его к стенке пробирки, и отжав избыток жидкости удаляют зонд и пробирку плотно закрывают. 7

8 При комнатной температуре не более 6 часов, при температуре 2-8 о С не более недели. Допускается только однократное замораживание материала. Мазки из конъюнктивы глаза Забор мазка осуществляется сухим стерильным ватным тампоном под местной анестезией (2 капли раствора декаина или инокаина). Опустив нижнее веко провести 4-5 раз по конъюнктиве, захватывая внешний и внутренний углы глаза, вращая зонт. После забора материала рабочую часть зонда погружают в пробирку со стерильной транспортной средой. Погрузив рабочую часть тампона в транспортную среду, вращают зонд секунд, вынимают зонд из раствора, прижимая его к стенке пробирки, и отжав избыток жидкости удаляют зонд и пробирку плотно закрывают. При комнатной температуре не более 6 часов, при температуре 2-8 о С не более недели. Допускается только однократное замораживание материала. Ликвор: Спинномозговую жидкость получают путем прокола поясничной, субокципитальной области или мозговых желудочков одноразовыми пункционными иглами. Переносят 1 мл ликвора в стерильные одноразовые пробирки типа «Эпиндорф» на 1,5 мл. При температуре 2-8 о С в течение суток, при минус 20 о С до 1 недели. Допускается только однократное замораживание материала. Слюна: Перед забором слюны исключается прием пищи в течение 4-х часов и производится трехкратное полоскание полости рта физраствором. Забор слюны производится в одноразовые стерильные пробирки типа «Эпиндорф» на 1,5 мл в количестве 0,2-1,0 мл. При температуре 2-8 о С в течение суток, при минус 20 о С до 1 недели. Допускается только однократное замораживание материала. Моча: 8

9 Для анализа отбирается первая порция утренней мочи или не ранее чем через 2-3 часа после последнего мочеиспускания в количестве не менее 10 мл в специальный флакон или стерильную пробирку без консервирующего раствора. Для исследования используется только свежий материал. Материал должен быть доставлен в лабораторию в течение 1-2 часов. В специальном контейнере с охлаждающими элементами или в термосе со льдом Сперма: Забор спермы осуществляется в стерильные одноразовые флаконы или пробирки. При температуре 2-8 о С в течение суток, при минус 20 о С до 1 недели. Допускается только однократное замораживание материала. Секрет предстательной железы: После окончания массажа предстательной железы ее секрет в количестве 0,5-1 мл собирают в одноразовые стерильные пробирки типа «Эпиндорф» на 1,5 мл. При невозможности получить секрет, сразу после массажа собирают первую порцию мочи (в которой содержится секрет предстательной железы) в количестве 10 мл. При температуре 2-8 о С в течение суток, при минус 20 о С до 1 недели. Допускается только однократное замораживание материала. Забор, хранение и транспортировка биологического материала для бактериологического исследования При заборе и подготовке биологического материала для бактериологического исследования необходимо соблюдать следующие правила: 1. Осуществлять забор биологического материала строго следуя инструкции, только стерильными одноразовыми инструментами в стерильные одноразовые флаконы, пробирки, контейнеры. Работать в одноразовых перчатках. 2. Забор клинического материала должен производиться в пробирки с транспортной средой, предоставляемой фирмой производителем тест-систем (в случаи, где использование транспортной среды является необходимым) Недопустимо использование транспортной среды других фирм-производителей. 3. Сразу после забора биологического материала плотно закрывать флакон (пробирки) с пробами, не касаясь их внутренней поверхности и внутренней поверхности крышек. 4. Строго соблюдать правила хранения и транспортировки клинических проб. Соскобы из урогенитального тракта: Забор биологического материала 9

10 Соскоб из урогенитального тракта женщин Мазок (соскоб) производится из трех различных локализаций: цервикальный канал, уретра, задний свод влагалища. Забор мазка производится одноразовым стерильным зондом. После очищения сухим тампоном от слизи и гноя поверхности шейки матки ввести зонд в цервикальный канал на 1-1,5 см, вращая его в течении 3-5 секунд. Извлекают зонд, избегая касания стенок влагалища, и помещают его в стерильную пробирку с транспортной средой. Погрузив рабочую часть тампона в транспортную среду, вращают зонд секунд, вынимают зонд из раствора, прижимая его к стенке пробирки, и отжав избыток жидкости удаляют зонд и пробирку плотно закрывают. При заборе биологического материала из заднего свода влагалища после очищения поверхности одноразовым стерильным зондом делают мазок (соскоб). Погрузив рабочую часть тампона в транспортную среду, вращают зонд секунд, вынимают зонд из раствора, прижимая его к стенке пробирки, и отжав избыток жидкости удаляют зонд и пробирку плотно закрывают. Перед забором мазка из уретры необходимо обработать ее наружное отверстие тампоном, смоченным стерильным физраствором, и произвести массаж уретры о лобковое сочленение. Ввести зонд в уретру на глубину 1-1,5 см, вращая его 3-5 секунд. Извлекают зонд и помещают его в пробирку с транспортной средой. Погрузив рабочую часть тампона в транспортную среду, вращают зонд секунд, вынимают зонд из раствора, прижимая его к стенке пробирки, и отжав избыток жидкости удаляют зонд и пробирку плотно закрывают. Соскоб эпителиальных клеток из уретры мужчин Перед забором мазка из уретры необходимо обработать головку полового члена в области наружного отверстия уретры тампоном, смоченным стерильным физраствором. Производят массаж уретры. При наличии свободно стекающих из уретры выделений удаляют их сухим тампоном. Одноразовый зонд вводят на глубину 3-4 см, вращая его в течении 3-5 секунд. Извлекают зонд и помещают его в пробирку с транспортной средой. Погрузив рабочую часть тампона в транспортную среду, вращают зонд секунд, вынимают зонд из раствора, прижимая его к стенке пробирки, и отжав избыток жидкости удаляют зонд и пробирку плотно закрывают. После забора биологического материала желательно сразу произвести посев на питательную среду. Если это невозможно, то флакон с транспортной средой хранят при температуре 2-8 о С не более 1 суток. При этом следует учитывать, что некоторые микроорганизмы (трихомонады, гонококки) чувствительны к низкой температуре. В специальном контейнере не более 2 часов. Моча: Для анализа отбирается первая порция утренней мочи или не ранее чем через 2-3 часа после последнего мочеиспускания в количестве не менее 10 мл в специальный контейнер Для исследования используется только свежий материал. Материал должен быть доставлен в лабораторию в течение 1-2 часов. Если это невозможно, то флакон с материалом хранят при температуре 2-8 о С не более 1 суток. 10

11 температуре 2-8 о С Сперма: Забор спермы осуществляется в стерильные одноразовые контейнеры. После забора биологического материала желательно сразу произвести посев на питательную среду. Если это невозможно, то флакон с транспортной средой хранят при температуре 2-8 о С не более 1 суток. При этом следует учитывать, что некоторые микроорганизмы (трихомонады, гонококки) чувствительны к низкой температуре. температуре 2-8 о С. Секрет предстательной железы: После окончания массажа предстательной железы ее секрет в количестве 0,5-1 мл собирают в одноразовые стерильные пробирки типа «Эпиндорф» на 1,5 мл. При невозможности получить секрет, сразу после массажа собирают первую порцию мочи (в которой содержится секрет предстательной железы) в количестве 10 мл. При температуре 2-8 о С в течение суток, при минус 20 о С до 1 недели. Допускается только однократное замораживание материала. 11

docplayer.ru

Бактериальный посев и 9 правил сбора биологического материала

Правильный диагноз невозможно поставить без предварительно сделанных анализов. Полученная информация помогает врачу в диагностике и обеспечивает назначение правильного лечения. Одним особенным анализом считается бактериальный посев. Он берется из разного биологического материала. В статье рассмотрим все стороны и особенности этой процедуры.

Определение бактериального посева

Под бактериологическим посевом понимают особенное микробиологическое исследование, которое проводится в условиях лаборатории. В качестве исследуемого образца берется биологический материал, который подвергается просеиванию при определенной температуре. Цель такого исследования: выявить наличие микроорганизмов и установить их количество. В дальнейшем врач назначает по полученным данным лечение.

Бактериологический анализ широко применяется в онкологии, гинекологии, отоларингологии, хирургии, урологии и других областях.

Показанием для проведения бактериологического исследования считается воспалительный процесс в органах, системах человека и подозрение на заболевание сепсис.

Для исследования могут брать следующий бактериологический материал:

• Мокроту.
• Слизь из зева.
• Слизь из уретры.
• Мочу.
• Сперму.
• Грудное молоко.
• Содержимое кисты.
• Спинномозговую жидкость.
• Желчь.
• Кровь.
• Материал, отделяемый от раны.
• Содержимое воспалительных очагов.
• Кал.
• Слизь из носоглотки.

Из каждого перечисленного биологического материала высеивают следующие микроорганизмы:

1. Слизь из урогенитального тракта исследуют на гонококк, трихомонаду, грибы Candida, уреаплазму, грибы Neisseria gonorrhoeae , микоплазму, грибы Trichomonas vaginalis, листерии. Так же здесь проверят состояние бактериальной флоры.
2. Кровь обследуют на стерильность.
3. Слизь зева и носа проверяют на листерии, гемофильную палочку, гемолитические стрептококки, менингококк, коринобактерии дифтерии, пневмококки, золотистый стафилококк.
4. Раневое отделяемое, гнойные отделения, биопунктат исследуют на синегнойную палочку и псевдомонады.
5. Кал проверяют на йерсинии, сальмонеллы, тифопаратифозный бактерии, условно-патогенные кишечные инфекции, пищевые токсикоинфекции. Так же испражнения обследуют на дисбактериоз кишечника.
6. Мазок, грудное молоко, мочу, соскоб, желчь, сперму, суставную жидкость проверяют на бактериальную флору.

Достоинства и недостатки бактериального посева

К положительным моментам бактериального посева относят:

• Метод исключает ложные реакции.
• Позволяет проводить проверку абсолютно любой жидкости.
• Результат исследования позволяет врачу правильно назначить лечение.

К отрицательной стороне относят:

• Достаточно длительный промежуток проведения исследования.
• Очень высокие требования к получению исследуемого материала.
• Жесткие требования к квалификации персонала, которые проводят бактериологическое исследование.

Как собирают биологический материал

Качество исследования сильно зависит от правильности собранного биоматериала. Поэтому существуют строгие правила по забору, без соблюдения которых невозможно получить правильную информацию о состоянии здоровья человека.

1. Собирать материал необходимо стерильными инструментами и помещать собранное только в стерильную посуду. Если это проигнорировать, забор материала и дальнейшие исследования станут бессмысленными.
2. Собирать биоматериал необходимо строго до начала проведения терапии антибиотиками. В противном случае лаборант выявит ложные данные. Если пациент на сегодняшний день уже проводит антибактериальную терапию, то бактериологические исследования нужно проводить только через 10 дней после окончания приема последней таблетки.
3. При сборе мочи нужно брать только среднюю порцию в утреннее время. Моча обязательно помещается в стерильную посуду. Количество собранного материала должно ровняться 10-15 мл. Кроме этого, обязательно нужно постараться доставить мочу в лабораторию менее чем через 2 часа после сбора.
4. Перед сбором слизи из носа или зева нельзя есть, пить, чистить зубы и полоскать ротовую полость дезинфицирующими средствами.
5. Сбор кала должен осуществляться стерильной лопаточкой. Время сбора утреннее. Складывать материал необходимо в стерильную посуду. Количество собранного кала должно равняться 15-30 грамм. Доставить его в больницу нужно менее чем за 5 часов. Нельзя оставлять кал на ночь и проводить замораживать его.
6. Грудное молоко сцеживается только после проведения гигиенической процедуры. Для этого область сосков и груди тщательно промывают водой, затем обрабатывают тампоном этилового спирта крепостью 70%. Далее сцеживают 15 мл молока, которое не идет на исследование. Следующие 5 мл сцеживают в стерильный контейнер, его и направляют в лабораторию. Доставить материал необходимо в течение двух часов.
7. Кровь на бактериологическое исследование забирают на фоне температуры. Для детей ее количество равняется 5 мл, для взрослых — 15 мл. Здесь нельзя забывать, что забор не проводится в период приема антибиотиков.
8. Собирать мокроту необходимо во время начавшегося приступа кашля. В этот момент из горла выделяется слизь. Мокрота доставляется в лабораторию в течение одного часа.
9. У женщин материал собирают спустя 14 дней после менструации, женщинам нельзя мочиться в течение 2 часов, а так же после приема антибиотиков должен пройти минимум один месяц. При сборе спермы у мужчин нельзя мочиться примерно 5-6 часов до взятия анализа.

Особенности проведения бактериологического анализа

Исследованию подвергаются любые материалы. У каждого из них есть свои особенности проведения.

Посев крови

В нормальном состоянии кровь не содержит никаких возбудителей. Определить их наличие под прибором микроскоп просто невозможно. Для выявления микроорганизмов бактерии сначала размножают в жидкой среде, которая является для них питательной. Затем образцы крови находятся в созданных для них условиях (при температуре 37˚С) до начала видимого роста. Длится этот процесс от 6 до 18 часов. Если исследуются бактерии, которые растут очень долго, кровь выдерживается в питательной среде в течение нескольких дней. Когда бактерии достигают определенных размеров их можно увидеть под микроскопом. На следующем этапе с выявленными бактериями проводят химические реакции, для того чтобы точно определить их вид.

Посев мочи

При исследовании лаборант выявляет микроорганизмы и определяет их количество. Диагностическое значение равняется 104-105 КОЕ/мл. Если их концентрация превышает норму, то говорят о положительном результате, то есть бак посев плохой. Лечение в этом случае сводится к приему антибиотиков, которые наиболее чувствительны к высеянным микроорганизмам. При анализе бывают случаи, когда общий анализ хороший, человек не имеет жалоб, а бак посев показывает кишечную палочку. В этом случае, скорее всего, не были соблюдены стерильные условия. Поэтому сбор и проведение повторных исследований придется повторить.

Посев мокроты

Подобный анализ назначается при частых и затяжных бронхитах. Вместе с выявлением патогенных микроорганизмов лаборант определяет чувствительность к антибиотикам. Это позволяет в дальнейшем правильно назначить эффективное лечение, сократить время болезни и добиться необходимого выздоровления.

Посев кала

Кал проверяют при различных кишечных инфекциях. В материале лаборант идентифицирует возбудителя. В здоровом кишечнике имеются некоторые условно-патогенные микроорганизмы в нужном качестве и количестве. Если микрофлора кишечника изменяется, то названные показатели тоже меняются. Больной жалуется на урчание, проблемы со стулом, метеоризм и боли в животе. Если возникает рвота и сильное расстройство стула, то бак посев проводят на дисбактериоз.

Бактериальный посев кала имеет следующую расшифровку:

• Первая степень: имеются небольшие изменения микробиоценоза, чужая микрофлора не наблюдается.
• Вторая степень: изменено количество бифидофлоры и лактофлоры, так же проверяют число эшерихий.
• Третья степень: на этой стадии резко снижены или вообще отсутствуют лактофлоры, бифидофлоры, но преобладают дрожжеподобные грибы и гемолитические стафилококки.
• Четвертая степень: здесь микробиоценоз сильно изменен, количество патогенных микроорганизмов сильно увеличено, выявляется протей.

На результат сильно влияют (в неправильную сторону) прием прибиотиков и антимикробных средств.

Посев спермы

Эякулят проверяют при болезнях урогенитальной области, а так же при подозрении на мужское бесплодие. Бак посев выявляет патогенные микроорганизмы, на которые в дальнейшем направляется основное лечение.

Есть несколько правил сдачи бак посева:

1. Полное исключение половых контактов в течение 7 дней.
2. Категорический запрет на прием алкогольной продукции за 4 дня до анализа.
3. Если мужчиной принимались антибиотики, то посев назначают через 2 недели после окончание приема.
4. Собирать сперму необходимо в контейнер со специальной питательной средой.
5. Перед процедурой необходимо пописать, хорошо на совесть помыть руки с антибактериальным средством, сделать туалет с мылом мочеиспускательного канала. Далее половой член и головку вытереть стерильной салфеткой. Сперму собрать с помощью специальных манипуляций под названием мастурбация. Касаться в этот момент к

borninvitro.ru

Правила забора материала для микробиологического исследования

Правила забора материала для микробиологического исследования

Биологический материал целесообразно получать до начала антимикробной терапии.

• Материал для бактериологического исследования берут непосредственно из очага инфекции или исследуют клинически значимый биологический материал. 
• Необходимо соблюдать асептику, избегая контаминации биологического материала посторонней микрофлорой. 
• Количество материала должно быть достаточным для проведения исследования. 
• Собирают материал в стерильную посуду с пробками, полученную в микробиологической лаборатории: для взятия отделяемого из раны, мазков со слизистых оболочек, из глаза, уха, носа, зева, цервикального канала, влагалища, анального отверстия следует использовать стерильные ватные тампоны, для крови, гноя, спинномозговой жидкости и экссудатов используют стерильные шприцы и специализированные транспортные среды, для мокроты, мочи и кала - стерильные плотно закрывающиеся небьющиеся контейнеры.

Внимание: необходимо следить за сроками годности посуды, полученной в лаборатории. Если посуда, стерилизуемая в лаборатории, не использована в срок, указанный на этикетках её необходимо вернуть в лабораторию для повторной стерилизации.

• Нативный материал доставляют в лабораторию в максимально короткие сроки (для большинства образцов не позднее 1,5-2 ч после их получения). Допускается хранение материала в холодильнике при 4° С (это не относится к биологическому материалу, полученному из стерильных в норме локусов: ликвору, крови, внутрисуставной и плевральной жидкости!). 
• При использовании транспортных сред биологический материал можно хранить в течение 24 ч. 
• Жидкий биологический материал можно транспортировать непосредственно в шприце, на кончик которого надет стерильный колпачок или загнутая под углом игла. 
• Для исследования на анаэробы биологический материал необходимо помещать в анаэробные условия. Для жидких образцов (кровь, гной, экссудат, жидкости из стерильных полостей) используют специальные флаконы с жидкой питательной средой, заполненные газовой смесью определенного состава, куда из шприца уколом иглы через резиновую плотно завальцованную крышку вносят материал. Можно использовать анаэробные коммерческие тампоны с транспортной средой. 
• Транспортировка осуществляется в металлических биксах (пеналах), термоконтейнерах, которые должны легко подвергаться обработке. 
• К материалу прилагают сопроводительный до­кумент, где указывают наименование, источник и метод получения биологического материала, дату и время его взятия; ФИО, пол и возраст больного; название учреждения, отделения, № палаты; пред­полагаемый диагноз инфекционной патологии и предшествующую антибактериальную терапию; фамилию и подпись врача, направившего материал для проведения бактериологического исследова­ния.

Внимание: погрешности в правилах сбора материала для микробиологического исследования приводят к ошибкам в диагностике возбудителя и определении его антибиотикочувствительности.

Исследование крови

• Для взятия крови используют стерильные шприцы или системы для одноразового пользования. 
• Кровь берут во время подъёма температуры из периферической вены с соблюдением правил асептики и мер индивидуальной защиты, предусмотренных при работе с кровью (использовать резиновые перчатки). 
• Кровь засевают в питательные среды сразу после взятия у постели больного или процедурной. 
• Перед использованием флаконов визуально определяют прозрачность среды, любое помутнение свидетельствует об их непригодности. 
• При подозрении на анаэробную инфекцию необходимо одномоментно собирать кровь в два флакона – с питательными средами для аэробного и анаэробного культивирования. 
• Не следует брать кровь из сосудистых катетеров, кроме случаев, когда предполагается инфекция катетерного происхождения. 

Забор и посев кровиДля предотвращения контаминации кожу пациента над пунктируемой веной тщательно обработать следующей последовательности:

• 70% этиловым спиртом (или заменяющим его антисептиком) 
• 5% настойкой йода (или йодопирона, йодоната, хлоргексидина) начиная обработку от центра будущего прокола к периферии - 30 секунд 
• этиловым 70% спиртом (или заменяющим его антисептиком) 
• дают высохнуть обработанному участку кожи 
• не пальпируя вену повторно, производят венепункцию 
• вновь обрабатывают участок 70% этиловым спиртом (или заменяющим его антисептиком). 
• При аллергической реакции на йод кожу дважды обрабатывают 70% этиловым спиртом (или заменяющим его антисептиком). 

Использование сред, приготовленных в лаборатории:Среды в стеклянных флаконах, закрытые стерильными ватно-марлевыми пробками и предохранительными стерильными бумажными колпачками: - двухфазная среда» (комбинация плотной и жидкой среды в одном флаконе) – для роста аэробных микроорганизмов  - полужидкие специальные среды - для роста анаэробных микроорганизмов

• Посев осуществляют во флаконы со средами над пламенем спиртовой горелки. 
• Взятие и посев крови осуществляют два человека – в то время как один обрабатывает кожу пациента, пунктирует вену и берёт кровь, другой - над пламенем спиртовки
• Открывает пробки флаконов, подставляет флаконы со средой под струю крови из шприца или системы, обжигает горлышки и пробки флаконов и закрывает их. 
• Рекомендуемое соотношение объёмов крови и среды 1:10 (10 мл у взрослых, 5 мл у детей)

Использование коммерческих сред: - для аэробных микроорганизмов (с зелёной крышкой) - для анаэробных микроорганизмов (с красной крышкой) - педиатрические флаконы – (с жёлтой крышкой) для исследования крови в объёме до 5 мл

• Снимают предохранительную пластиковую крышку. 
• Дезинфицируют резиновую пробку флакона 70% этиловым спиртом (или заменяющим его антисептиком). 
• Дают просохнуть обработанной поверхности. 
• Прокалывают пробку флакона иглой шприца и производят посев крови. 
• Объём исследуемой крови по прилагаемой инструкции - обычно 10-30 мл для взрослых и 1- 5 мл для детей до 12 л (метка на этикетке флакона позволяет оценить объём взятой крови). 
• Сначала производят посев в «анаэробный» флакон, затем – в «аэробный» во избежание попадания воздуха из шприца. 
• Перемешивают осторожно круговыми движениями содержимое флакона. 
• Маркируют флаконы и до транспортировки в лабораторию содержат в термостате или при комнатной температуре в защищённом от света месте (не в холодильнике!!) 
• Исследования крови и других жидкостей организма с помощью анализатора культур крови BacT/ALERT-

При отсутствии в отделении флаконов для гемокультур.

• В исключительных случаях, при экстренной ситуации допускается использование 20-миллилитрового шприца с иглами. 
• В шприц предварительно набирают 0,5-0,7 мл стерильного гепарина. 
• Заменяют иглу. 
• Затем пунктируют вену, соблюдая правила асептики. Набирают 10-15- мл крови. 
• Перемешивают осторожным покачиванием с гепарином (иглу со шприца не снимают). 
• В этом же шприце с согнутой у основания иглой (или надетым стерильным колпачком) немедленно отправляют в лабораторию.

Исследование сосудистого катетера

• Исследуют при подозрении на инфекцию катетерного происхождения.
• В асептических условиях отрезают его дистальный (внутрисосудистый) конец около 5 см длиной. 
• Помещают в стерильный контейнер (пробирку). 
• Доставляют в лабораторию немедленно. 
• Важно не допускать высыхания образца. 

Исследование ликвора

• Спинномозговую жидкость получают при люмбальной пункции или пунции боковых желудочков мозга в объеме 3 -5 мл, помещают в стерильную, желательно центрифужную пробирку и немедленно доставляют в лабораторию.
• Полученную пробу доставить в лабораторию, избегая чрезмерного перегрева и особенно охлаждения (может быть использован термос). Охлаждение ликвора ниже 300 ведёт к гибели менингококков. 
• При невозможности немедленно доставить в лабораторию ликвор сохраняют при 370 в термостате. 
• При использовании коммерческих сред (BacT/ALERTFA и др.) свежевзятый ликвор в количестве 5-10 мл из шприца, проколов резиновую пробку, вносится во флакон со средой (см. исследование крови).

Исследование жидкостей организма из стерильных в норме полостей

• Исследуют перитонеальную, синовиальную, плевральную, суставную, перикардиальную жидкости. 
• Для бактериологического исследования используют жидкости, взятые при пункции и аспирации. 
• Попавшие в шприц пузырьки воздуха удаляют и помещают жидкость в анаэробную транспортную систему или отправляют её в шприце, предварительно сняв (или загнув) иглу или надевают на канюлю защитный стерильный колпачок. 
• Минимальный объём жидкости для выделения бактерий 1-5 мл, для выделения грибов или микобактерий не менее 10 мл. 
• Избыток жидкости или гной транспортировать в стерильных контейнерах с завинчивающейся крышкой. 
• Взятие материала тампоном не предохраняет анаэробы от воздействия кислорода воздуха, не позволяет приготовить качественный препарат для микроскопии, не гарантирует выделение культуры при незначительном количестве микробов в образце. 
• Не рекомендуется использовать антикоагулянты (цитрат, этилендиаминтетрауксусную кислоту), подавляющие рост некоторых видов бактерий. 
• При необходимости лучше использовать гепарин. 
• При достаточном количестве жидкости можно производить посев из шприца во флаконы со средой для гемокультур в соотношении 1:5 - 1:10 (5-10 мл). Однако при этом становится невозможной прямая бактериоскопия материала, а сроки идентификации удлиняются на сутки в сравнении с изолятами, выделенными при первичном посеве на плотные среды.

Исследование материала при раневой инфекции

• Взятие материала производит лечащий врач во время операции или перевязки. 
• В большинстве случаев исследуют поражённые ткани и аспираты. 
• Наиболее правильный способ взятия жидких материалов – объёмно с помощью стерильного шприца. Отбор материала тампоном производят только при невозможности осуществления объёмного метода. 
• Промыванием раневой поверхности физ. раствором удаляют местно применяемые антисептические и антибактериальные препараты.
• Кожу вокруг раны обрабатывают спиртом или другим антисептиком, некротические массы, детрит, гной удаляют стерильной сухой салфеткой. 
• Все ёмкости с отобранным материалом плотно закрывают стерильными пробками. 
• Доставляют в лабораторию в течение 1 часа. При невозможности доставить материал в течение этого времени, он должен храниться в холодильнике, но не более 2 часов.

Можно использовать специальные транспортные контейнеры и пробирки со средами. На транспортной среде материал хранится 24 часа.

Отделяемое открытых инфицированных ранМатериал берут двумя стерильными тампонами (один для посева, второй - для бактериоскопии) круговыми вращательными движениями от центра к периферии поражённого участка помещают в стерильную пробирку.

Отделяемое из дренажей.

• Берут стерильным шприцем и в количестве 1-2 мл помещают в стерильную пробирку или доставляют в шприце. 
• Можно использовать для исследования концы удалённых дренажных трубок 

Кусочки тканейПомещают в другую плотно закрывающуюся стерильную ёмкость (пробирку), содержащую небольшое количество стерильного физ. раствора.Глубокие раны или абсцессы.

• Поверхность раны дезинфицируют 70% этиловым спиртом, затем 1-2% йодным раствором. 
• Материал берут из глубины, избегая контаминации поверхностной микрофлорой раны. 

Биоптат с ожоговой поверхностиПоверхность раны дезинфицируют и берут образец с помощью пункционной биопсии (3-4 мм) для количественного исследования.Язвы и узелковые утолщения

• Пораженную область кожи дезинфицируют, удаляют поверхностный слой и делают соскоб со дна язвы или узелкового утолщения. 
• Если имеется экссудат, его собирают шпри­цем или стерильным тампоном. 

Раны после укусов

• Гнойное содержимое из раны получают шприцем после надреза, дренирования или поверх­ностной обработки инфицированной раны. 
• При свежих укусах бактериологическое ис­следование не проводят, так как в этот период труд­но выделить этиологически значимый микроорга­низм. 

Кости

• Материал получают при оперативном вмеша­тельстве. Образец помещают в стерильный контей­нер без формалина и других консервантов. 
• Для предотвращения высыхания образца в контейнер может быть добавлен стерильный физ.­раствор.

Материал при инфекциях верхних дыхательных путейОбразцы из зева

• Исследуют прежде всего для выявления α-гемолитических стрептококов группы А, H.influenzae( при эпиглотитах).При наличии специфического анамнеза проводят исследование для исключения гонококковой этиологии фарингита. 
• Не следует брать материал при воспалённом надгортаннике, так как может возникнуть обструкция дыхательных путей! 
• Мазок из зева следует брать до еды или через 2 - 3 часа после приёма пищи. Перед взятием пробы больному необходимо прополоскать рот тёплой кипячёной водой. 
• Аккуратно прижимая язык шпателем, вводят стерильный тампон между дужками миндалин и язычком. 
• Движением тампона вперёд и назад собирают материал с задней поверхности глотки, миндалин и участков воспаления или изъязвления слизистой.
• Тампон помещают в стерильную пробирку, при необходимости используя транспортную среду. 

Внимание: При взятии пробы со слизистой зева (глотки) нельзя касаться щёк, языка, дёсен, а также собирать слюну.

Взятие материала при исследовании на возбудителей дифтерии.

• Для взятия материала используют стерильные ватные сухие тампоны. 
• Материал из ротоглотки и носа берут отдельными тампонами, натощак или не ранее, чем через 2 часа после еды, при хорошем освещении с использованием шпателя, не касаясь тампоном языка, слизистых щек и зубов. 
• При наличии налетов материал следует брать с границы пораженных и здоровых тканей, слегка нажимая на них тампоном. 
• Для взятия материала из носа используют один тампон, который вводят сначала в один, а потом в другой носовой ход, не касаясь крыльев носа снаружи 
• Необходимо обеспечить доставку материала в лабораторию не позднее 2-х часов, а при использовании глицериновых тампонов - в течение 4-х часов. 

Бактериологическое исследование носоглоточной слизи на менингококки

• Исследуемый материал берут из задней стенки носоглотки натощак или через 3 - 4 часа после еды стерильным ватным тампоном, укрепленным на изогнутой проволоке. 
• Материал берут с обязательным надавливанием шпателем на корень языка. Тампон вводят концом кверху за мягкое небо в носоглотку и проводят 2 -3 раза по задней стенке. 
• При извлечении тампон не должен касаться зубов, слизистой щек, языка и язычка. 
• Материал может быть взят смоченным тампоном, который затем доставляют в лабораторию. 
• Питательную среду для смачивания тампонов получают в бактериологической лаборатории. Можно использовать специальные транспортные среды. 
• Полученную пробу доставить в лабораторию, избегая охлаждения

Мазок со слизистой передних отделов полости носа.

• Исследование обычно проводится для выявления носительства метициллинрезистентных штаммов S.aureus. 
• Мазок со слизистой носа берут одним стерильным тампоном. 
• Тампон вводится сначала в здоровую ноздрю до упора на уровне носовой раковины и вращательными движениями собирают материал со слизистой. Повторяют процедуру в другом носовом ходе. 
• Тампон помещают в стерильную пробирку. 

Аспират из придаточных пазух

• Исследуют при бактериальных синуситах помимо исследования микрофлоры носовой полости. 
• Материал отсылают в лабораторию в анаэроб­ной транспортной среде или непосредственно в шприце. 
• He рекомендуется исследовать промывную жидкость из носоглотки, так как образцы контаминируются нормальной микрофлорой верх­них дыхательных путей, что не позволяет правиль­но трактовать результаты анализа. 
• При хронических синуситах возможен прицельный забор материала для микробиологического исследования с использованием эндоскопов. 

Исследование отделяемого ухаЖидкость при тимпаноцентезе

• Исследуют при среднем отите в случаях, если первичная терапия оказалась безуспешной или если тимпаноцентез проводился как лечебная процедура. 
• Очищают наружный слуховой проход слабым раствором детергента, после прокола барабанной перепонки врач-отоларинголог шприцем собирает жидкость и помещает ее в стерильный контейнер или отправляет в лабораторию в шприце с загнутой иглой или с защитным колпачком. 
• При невозмож­ности своевременной доставки целесообразно ис­пользовать транспортную среду. 
• При самопроизвольной перфорации барабан­ной перепонки экссудат собирают стерильным там­поном, используя слуховое зеркало. Однако в этом случае высока вероятность контаминации биологи­ческого материала эндогенной микрофлорой. 

Материал при воспалении наружного уха.

• Обрабатывают кожу 70% этиловым спиртом и промывают стерильным изотоническим раствором хлорида натрия (физраствором). 
• Материал из очага берут стерильным ватным тампоном. Тампон помещают в стерильную пробирку. 
• При поражении среднего и внутреннего уха исследуют пунктаты и материал, полученный во время оперативных вмешательств, собранные в стерильную пробирку или транспортную среду. 

Исследование отделяемого глаз.

• Накануне, за 6-8 часов (на протяжении ночи, предшествующей забору материала) отменяют все медикаменты и процедуры. 
• Материал забирают с пораженных мест в разгар воспалительного процесса с соблюдением правил асептики. 

Отделяемое с конъюнктивы

• Берут стеклянными стерильными палочками или платиновой петлей, предварительно фламбированной в пламени спиртовки и остуженной и погружают в 0,2 % сахарный бульон. 
• При наличии достаточно обильного гнойного отделяемого использую стерильные ватные тампоны (желательно коммерческие), которыми берут гной с внутренней поверхности нижнего века движением к внутреннему углу глазной щели. 
• Необходимо следить, чтобы при моргании ресницы не касались тампона (придерживать веки руками) 

Край век.Корочки гноя удаляют пинцетом. Берут материал из язвочки у основания ресниц.Роговица.

• Материал на исследование после обезболивания, можно взять платиновой петлёй или другим подходящим инструментом. 
• Если пациент применяет контактные линзы, необходимо исследовать их внутреннюю поверхность. 
• В кабинете врача производят посев на питательный бульон. 
• Пробы клинического материала доставить в лабораторию не замочив пробки, чтобы не исказить результат исследования.

Материал при инфекциях нижних дыхательных путей

Мокрота.

• Исследуют свободно откашливаемую мокроту, утреннюю порцию, натощак 
• Пациент предварительно должен почистить зубы, дёсны, язык, слизистую оболочку щёк зубной щёткой и прополоскать рот кипяченой водой. 
• Если мокрота отделяется плохо, накануне пациенту дают отхаркивающие средства или проводят ингаляцию физ. раствором. 
• Мокроту собирают в стерильную посуду с крышкой. 
• Сроки доставки мокроты в лабораторию не должны превышать 1,5-2 часа от момента её получения (допускается хранение в холодильнике, но не более 6 часов), т.к. задержка ведёт к аутолизу S.pneumoniae, а за счёт размножения бактерий-контаминантов меняется истинное соотношение микрофлоры бронхиального секрета. 

Качество собранной мокроты можно оценить по данным микроскопии нативных мазков по Граму.

При наличии в мазке мокроты более 10 эпителиальных клеток в поле зрения и менее 25 полиморфно-ядерных лейкоцитов (ПЯЛ) при малом увеличении микроскопа (объектив Х10) высока вероятность контаминации образца содержимым полости рта (слюной). Дальнейшее исследование такого материала нецелесообразно, материал необходимо взять повторно.

Трахеобронхиальные смывы

• Исследуют при отсутствии мокроты или невозможности её выделить естественным путём. 
• Специальным шприцем в трахею вводят около 10 мл стерильного физ. раствора и собирают откашливаемый смыв в стерильную посуду. 
• Бронхиальные смывы, в том числе вблизи очага воспаления, могут быть сделаны с помощью бронхоскопа. 
• Недостатком является очень часто значительное разведение трахеобронхиального содержимого, что снижает возможность выделения бактерий, а концентрация их падает примерно в 100 раз по сравнению с мокротой. 

Плевральная жидкость.

• Кожу перед пункцией обрабатывают 70% этиловым спиртом, затем спиртовой настойкой йода, затем опять спиртом. 
• После прокола жидкость собирают шприцем в сте­рильную пробирку и незамедлительно отправляют в лабораторию. 
• Допускается посев плевральной жидкости (по 5 мл) в аэробные и анаэробные флаконы, ис­пользуемые для исследования крови.

 Моча при инфекциях мочевыводящих путей 

• Исследуют утреннюю среднюю порцию (10-20мл) сво­бодно выпущенной мочи (за ночь концентрация бактерий в мочевом пузыре возрастает). 
• Не следует принуждать пациента к приему жидкости для фор­сирования диуреза, так как происходит разбавле­ние мочи и снижение числа бактерий. 
• Для сбора мочи используют стерильные ём­кости которые закрываются резиновой стерильной пробкой. Нельзя собирать мочу из мочеприемника или судна. 
• Перед взятием мочи проводят тщательный туалет наружных половых органов с мылом и кипяченой водой во избежание излишней ее контамина­ции при мочеиспускании нормальной микрофло­рой промежности. 
• Доставка мочи в лабораторию должна осу­ществляться в максимально короткие сроки. Посев следует проводить не позднее 2 ч после взя­тия материала либо в течение 8 ч при условии ее хранения в холодильнике. (При 4°С число бакте­рий в моче обычно остается стабильным в преде­лах 24 ч). 
• Взятие мочи следует повторить, если нет ус­ловий для ее хранения в холодильнике, и с момента взятия образца прошло более 2 часов, в противном случае результаты анализа могут быть недостовер­ными. 
• Недопустимо бактериологическое исследова­ние мочи, собранной в течение суток. 
• Не рекомендуется исследовать мочу, полу­ченную при наличии постоянного катетера 

Материал при инфекциях урогенитального трактаИсследование отделяемого женских половых органов Внимание: взятие материала для микробиологического исследования проводит акушер-гинеколог до проведения мануального исследованияАмниотическаю жидкостьСобирают через катетер, либо аспирируют при кесаревом сечении, либо пунктируют плодный пузырь.Материал из уретры

• Собирают не ранее, чем через 1 ч по­сле мочеиспускания. 
• Отделяемое из уретры собирают стерильным ватным тампоном. 
• Если отделяемое получить не удается, наруж­ное отверстие уретры обмывают мылом и ополаски­вают кипяченой водой, вводят в уретру тонкий сте­рильный «уретральный» тампон на глубину 2-4 см, аккуратно вращают его в течение 2 сек., вынимают, по­мещают в соответствующую транспортную среду и доставляют в лабораторию. 

Материал из вульвы, преддверия влагалища

• Берут стерильным ватным тампо­ном.
• При воспалении бартолиниевых желез произ­водят их пункцию. 

Материал из влагалища.После введения зеркала и подъемника во вла­галище материал собирают стерильным ватным тампоном с заднего свода или с патологически из­мененных участков.Цервикальный канал.

• Обнажают шейку матки с помощью зеркал и влагалищную ее часть тщательно обрабатывают ватным тампоном, смоченным стерильным физрас­твором или стерильной водой. 
• Тонкий стерильный ватный тампон осторожно вводят в цервикальный канал, не касаясь стенок вла­галища, и берут материал. 
• Для бактериологческого исследования можно использовать соскоб слизистой, полученный при диагностическом выскабливании стенок цервикального канала.

Матка.

• Правильное взятие материала из матки может быть выполнено только при использовании специальных инструментов типа шприца-аспиратора., имеющего на зонде покрытие. 
• После прохождения зондом цервикального канала в полость матки раскрывают наружную оболочку зонда и набирают в шприц содержимое матки. 
• Материал из шприца помещают в стерильную пробирку. 

Придатки матки.Материал из очага инфекции (гной, экссудат, кусочки ткани) получают при оперативном вмеша­тельстве или при диагностической пункции опухо­левидных образований, проводимой через влага­лищные своды.Приготовление мазков для микроскопии.

• Помимо взятия материала на посев врач-гинеко­лог готовит мазки для микроскопии (не менее двух - для окраски по Граму и специальными метода­ми), используя отдельные стерильные тампоны или стерильные гинекологические инструменты. 
• Предметные стекла, предназначенные для приготовления мазков, маркируют. 
• Материал равномерно распределяют на пред­метном стекле осторожными движениями, избегая грубого втирания и резких штриховых движений инструментом. 
• Мазок высушивают при комнатной температу­ре, покрывают чистым предметным стеклом или по­мещают его в чашку Петри и отправляют в лаборато­рию. 
• Не допускается хранение влажного мазка между двумя стеклами. 

Исследование отделяемого мужских половых органов Уретра.

• Материал собирают не ранее 2 часов после мочеиспускания. 
• Вводят в уретру тонкий стерильный ватный тампон на глубину 2- 4 см, аккуратно вращают его в течение 1-2 сек., вынимают, помещают в транспорт­ную среду и доставляют в лабораторию.

Исследование секрета простаты.

• Перед отбором проб необходимо тщательно вымыть наружные половые органы и область заднего прохода тёплой водой с мылом, затем сполоснуть тёплой водой. 
• Проводят массаж простаты через прямую кишку. Материал собирают в стерильную пробирку или стерильным ватным тампоном. 
• При наличии симптомов острого простатита массаж простаты не проводят. 
• Для получения более достоверных результа­тов можно дополнить это исследование бактерио­логическим исследованием мочи, полученной пе­ред и сразу после массажа простаты, что позволит выявить источник инфекции. Основным методом лабораторной диагностики простатита, позволяю­щим определить локализацию очага инфекции, яв­ляется метод Meares и Stamey: исследованию под­вергают первую порцию мочи, среднюю порцию мочи, секрет простаты и порцию мочи, полученные после массажа предстательной железы (так назы­ваемая 4-стаканная проба). 
• Пробы клинического материала доставить в лабораторию не замочив пробки, чтобы не исказить результат исследования.

Придатки яичек. Материал собирают путем аспирации с помо­щью шприца и иглы.

Язва полового члена.

• Очищают поверхность язвы тампоном, смо­ченным физ.раствором. 
• Производят соскоб язвы до появления сероз­ной жидкости. 
• Стерильной салфеткой удаляют жидкость и органические наслоения (следует из­бегать кровоточивости). 
• Надавливают у основания язвы до появления прозрачной жидкости, аспирируют ее шприцем с тонкой иглой, закрывают иглу защитным колпач­ком и транспортируют в лабораторию.

Соскобы мочеиспускательного канала, шейки матки для исследования на урогенитальный хламидиоз

• Соскобы слизистых оболочек мочеиспускательного канала и шейки матки берут одноразовыми стерильными зондами, «щёточками», ложкой Фолькмана или аналогичными инструментами со слегка затуплёнными краями, соблюдая правила асептики и антисептики. 
• Наружные половые органы дезинфицируют, выделения удаляют тампонами или с помощью аспираторов. 
• При повышенной чувствительности слизистую оболочку предварительно анестезируют инстилляцией в мочеиспукательный канал 1-2 мл о.5% раствора дикаина. 
• Соскобы делают из глубины канала(до 6 см), со всех четырёх квадрантов. 
• Соскобы шейки матки берут после удаления слизистой пробки из глубины её канала, а также из влагалищной части шейки матки. 
• Соскобы берут осторожно, при лёгком надавливании. В материале должно быть возможно большее количество эпителиальных клеток и минимальное количество слизи, экссудата и примесей крови. 
• Соскобный материал распределяют тонким слоем на поверхность 8-миллиметровой лунки чистого обезжиренного предметного стекла так, чтобы все стороны тампона соприкасались с поверхностью стекла. 
• Мазок высушивают на воздухе 20-30 минут. 
• Допускается хранение мазка на стекле до фиксации 2-3 часа при комнатной температуре. 
• Мазки фиксируют соответственно методу окраски. 

Материал при исследовании на анаэробыОбщие показания к обследованию: сепсис неясной этиологии, гангрена, абсцессы, флегмона, перитонит, экссудативный плеврит, нагноения ран с подозрением на анаэробную инфекцию, гнойный артрит. Образцы клинического материала для исследования на анаэробы во избежания контакта с атмосферным воздухом получают при использовании инвазивных методов забора. 

Исследуемые материалы: кровь, плевральная, перитонеальная и сино­виальная жидкости, гной из абсцессов и других закрытых полостей (если объем гноя превышает 2 мл, то в пробирке под резиновой пробкой сохраняются относительно ана­эробные условия в течение нескольких часов), материалы из глубоких отделов свища (после очистки и асептической обработки наружного от­верстия) и ран. 

Если нет возможности использо­вать метод аспирации шприцем, материал берут стерильным ватным тампоном, который помещают в анаэробную транспортную среду сохранения и до транспортировки в лабораторию содержат при ком­натной температуре;Фрагменты костной и мышечной тканей размером 1x1 см, взятые из глубокого очага воспаления во время операции (если сроки доставки мате­риалов в лабораторию превышают 15-20 мин, фрагменты тканей погружают в небольшой объем стерильного физраствора).Не подлежат исследованию на анаэробы: отделяемое поверхностных ран и язв, мазки из зева, носа и ротовой полости,мазки из влагалища и цервикального канала, мокрота и бронхиальные смывы, моча (кроме мочи, полученной надлобковой пункцией мочевого пузыря), содержимое желудка, тонкого и толстого ки­шечника, фекалии (за исключением предполагаемой Clostridium difficile-ассоциированной диареи).

Исследование фекалий на патогенные и условно-патогенные энтеробактерии и дисбактериоз.

• При исследовании на дисбактериоз пациент за 1-3 дня до взятия пробы должен находиться на диете, исключающей приём продуктов, усиливающих процессы брожения в кишечнике, а также алкоголь, антимикробные лекарственные препараты и т. п. 
• Фекалии собирают сразу после дефекации из предварительно обработанного дез. раствором и тщательно промытого водой судна, горшка, специального лотка или с пеленки с помощью стерильной стеклянной палочки, проволочной петли или деревянного шпателя. 
• Порцию фекалий помещают в стерильный флакон. 
• Объём испражнений для исследования на патогенные энтеробактерии, флору и на дисбактериоз должен составлять 1/3 флакона, объёмом 20 мл. 
• При наличии в испражнениях патологических примесей (слизь, хлопья, гной) их следует включать в исследуемую пробу. 
• Материал доставляется в лабораторию в кратчайшие сроки 
• Испражнения для исследования на патогенные энтеробактерии можно получить непосредственно из прямой кишки с помощью ректальных, ватных или ватно - марлевых тампонов, укрепленных на металлической или деревянной палочке, вводя их круговыми движениями в прямую кишку на 6-8 см. 

Исследование желчи (дуоденального содержимого) при инфекциях желчевыводящих путей

• Желчь собирают при зондировании в проце­дурном кабинете отдельно по порциям: А, В и С (соответственно дуоденальное содержимое, пузырную желчь и желчь из желчных протоков) в три стерильные пробирки, либо во время оператив­ного вмешательства с помощью шприца в одну про­бирку. 
• Дуоденальное содержимое и желчь имеют зеленовато - желтый цвет и щелочную реакцию. Кислая реакция, белесоватый оттенок жидкости, наличие хлопьев, свидетельствует о примеси желудочного сока, такой материал не пригоден для исследования. 
• Полученные порции желчи доставляют в ла­бораторию не позднее 1 -2 ч от момента получения, следя за тем, чтобы пробирки находились в строго вертикальном положении

Микробиологическое исследование грудного молока.

• Отбор проб грудного молока производится в поликлинике или стационаре в специально выделенном помещении. 
• Перед сцеживанием молока женщина должна вымыть руки с мылом, тщательно обрабатывает соски и околососковую область молочных желез отдельными ватными тампонами, смоченными 700 спиртом (каждая железа обрабатывается отдельным тампоном). 
• Молоко из правой и левой молочных желез собирается в отдельную посуду.
• Первые 5-10 мл сцеженного молока исследованию не подлежат. 
• Последующие 3-5 мл сцеживаются в стерильные флаконы, которые закрываются стерильными пробками и доставляются в лабораторию не позднее 2-х часов в вертикальном положении во избежании опрокидывания и замачивания пробок. 
• До момента исследования молоко должно храниться в холодильнике. 
• Сцеженное накануне молоко исследованию не подлежит.

Правила забора и доставки материала от больных и контактныхв вирусологическое отделение МЛ ГЦГЭ.Пробы от больных гриппом и ОРВИ

• Для вирусологического исследования отбирают при первом появлении клинических симптомов, т.е. в остром периоде заболевания (не позднее третьего дня), так как в этот период в носоглотке больного, а также в крови находится максимальное количество вируса. 
• Пробы немедленно доставляют в вирусологическое отделение МЛ ГЦГЭ (ул. Короля,23, тел. 200-92-51). 
• Материалом для исследования служат соскоб из носа и мазок из зева, а также сыворотки крови, взятые в начале болезни и в период выздоровления. 

Соскоб из носа.Необходимо предварительно очистить полость носа от слизи ( взрослым – высморкаться, детям – очистить с помощью ватных турунд). Тампон вводят на глубину 2-3- см до нижней раковины, затем слегка опускают книзу , вводят в нижний носовой ход под нижнюю раковину, делают вращательное движение на пол оборота, таким образом, чтобы в мазке было как можно больше эпителиальных клеток. Удаляют тампон вдоль наружной стенки носовой полости, опускают в пробирку с физиологическим раствором. Палочку обломать, флакон закрыть резиновой пробкой. Для ранней диагностики краснухи выявляют антиген в клетках цилиндрического эпителия носа от больных или контактных. В качестве материала для исследования служит соскоб из нижнего носового хода (см.п.1- соскоб из носа).Мазки из зеваРекомендуется мазки делать до еды. Мазки отобрать при помощи сухого стерильного ватного тампона на палочке, которым протереть поверхность миндалин, задней стенки глотки и небных дужек. Тампон не должен касаться языка и слизистой полости рта. После взятия мазка тампон поместить в среду (розового цвета) во флакон из-под пенициллина, палочку обломать, флакон закрыть резиновой пробкой.

Кровь для серологических исследований

• Парные сыворотки исследуют для определения прироста титра антител к вирусам (во второй сыворотке по сравнению с первой). 
• Первую кровь берут в самом начале заболевания, вторую – 10-14 дней спустя. 
• Кровь в объеме не менее 1 мл берут в чистую центрифужную пробирку, отделяют сыворотку и помешают в пластиковую пробирку, которую хранят в морозильной камере до взятия второй сыворотки от того же больного. 
• В вирусологическое отделение МЛ обе сыворотки доставляются одновременно. 
• Результаты исследования зависят от качества доставляемого материала, от сроков забора и своевременной доставки в лабораторию. 

Пробы фекалийДля обследования контактных с рота -, энтеро-, полиовирусной инфекцииями забирают пробы фекалий массой 1-2 г. в чистый флакон.

sarstedt.com.ua

Правила забора биологического материала для генетических исследований.

1. Заказчик производит забор биологического материала для исследования, руководствуясь следующими обязательными правилами.

Для выделения ДНК и проведения процедур ДНК-диагностики подходят следующие виды биологических материалов: кровь, букальный эпителий, слюна, сперма, ворсины хориона и амниотическая жидкость, образцы различных органов и тканей, содержащих целые клетки с неразрушенными ядрами. Можно использовать пятна крови, нанесенные на пористую поверхность, а также трупный и эксгумированный материал. Однако, чаще всего источником ДНК служат клетки крови и плодный материал. Все остальные образцы передаются на анализ только после специальной договоренности с Исполнителем:

Правила забора крови - Для исследования должна быть предоставлена венозная кровь в объеме 4 - 8 мл. Забор крови осуществляется в вакутейнеры (специальные пробирки, содержащие антикоагулянт). В качестве антикоагулянта используют 0,5М раствор ЭДТА, рН 8,0. Соотношение объема ЭДТА к объему крови не должно превышать 1:10. Допускается использование раствора цитрата натрия или других антикоагулянтов кроме гепарина. Использование гепарина недопустимо! После забора крови пробирка должна быть плавно несколько раз перевернута вверх дном, чтобы кровь в пробирке тщательно перемешалась с антикоагулянтом. (NB! В противном случае кровь свернется и выделение ДНК из нее станет невозможным!) На пробирке на специальной клейкой ленте или полоске пластыря пишущей ручкой должна быть разборчиво написана фамилия, инициалы и статус того, чья кровь находится в данной пробирке (например, Иванов И.И., отец больного). К пробирке обязательно должно быть приложено направление, в котором четко указывается фамилия больного, диагноз, кем и откуда направлен в _______________________________________________________________________, а также нарисована родословная и указаны фамилии всех членов семьи, у которых был осуществлен забор крови.

Правила забора образцов букального эпителия – При взятии данных образцов при помощи специального одноразового инструмента (палочки) проводится соскоб эпителиальных клеток с внутренней поверхности щеки. При самостоятельном заборе образцов букального эпителия нужно действовать следующим образом:

1. Приобрести стандартные гигиенические ватные палочки. Внимание! Использовать только новую, не вскрывавшуюся ранее упаковку!

2. Клиент, у которого будет производиться забор образцов, должен прополоскать рот чистой кипяченой водой.

3. Взять ватную палочку за один конец и провести несколько раз другим концом палочки по внутренней поверхности щеки с легким нажимом.

4. Отрезать и выбросить конец палочки, за который держались рукой.

5. Оставшуюся половину палочки высушить на чистом листе бумаги при комнатной температуре.

От каждого клиента необходимо предоставить не меньше трех ватных палочек с образцами букального эпителия. Хранить и транспортировать образцы в бумажных конвертах при комнатной температуре. Образцы от разных клиентов должны быть в отдельных конвертах для исключения взаимного переноса биологического материала. Хранить и транспортировать образцы в бумажных конвертах при комнатной температуре. Образцы от разных людей должны быть в отдельных конвертах для исключения взаимного переноса биологического материала.

Правила предоставления плодного материала – в качестве плодного материала для проведения пренатальной диагностики используют либо биоптат хориона (при сроке беременности от 8 до 14 недель), либо амниотическую жидкость (на сроке от 15 до 24 недель). Биоптат ворсин хориона, помещенный в специальную среду, должен представлять собой видимый глазом кусочек ткани, отмытый от материнской крови и отделенный от материнской части ворсин. В противном случае, заражение плодного материала материнским не позволит правильно провести анализ. Флакон с плодным материалом должен быть подписан фамилией матери, у которой произведена пункция. К нему также необходимо приложить направление, в котором четко указать фамилию больного, диагноз, кем и откуда направлен в _______________________________________________, а также нарисовать родословную и указать фамилии всех членов семьи, у которых был осуществлен забор материала.

Правила оформления биологических образцов по установлению биологического родства (определению отцовства) по личному желанию граждан.

Для анализа должна быть предоставлена венозная или капиллярная кровь, букальный эпителий (См. правила забора крови, букального эпителия). Необходимо выслать в адрес Исполнителя опечатанные образцы крови и Акт взятия образцов биологического материала (Приложение № Б) с указанием лиц, осуществивших забор материала, а также копии паспортов родителей и свидетельства о рождении ребенка.

2. Исполнитель обязан немедленно информировать Заказчика о непригодности или недоброкачественного представленного биологического материала. Заказчик обязуется предоставить новый образец биологического материала для исследования в кратчайший срок. При этом срок выполнения работ будет исчисляться с момента предоставления нового образца для исследования.

3. Настоящее Приложение является на период его действия неотъемлемой частью Договора № ___ от «__» _________________20____ года.

studfiles.net

Забор, хранение и транспортировка инфекционного материала для лабораторной диагностики высокопатоген

 

Составитель:

заведующая клинико-диагностической лабораторией У «Гомельская областная туберкулёзная клиническая больница» Т.Д. Борисенко

Рецензенты:

главный специалист по клинической лабораторной диагностике УЗ Гомельского областного исполнительного комитета  А.А. Кудря

заведующая лабораторией диагностики вирусных и особо опасных инфекций ГУ «Гомельский областной центр гигиены, эпидемиологии и общественного здоровья» С.А. Думова

Характеристика вируса типа А (h2,N1)

Высокопатогенный вирус гриппа А (h2,N1) (ВПВГА) относится к семейству Orthomyxoviridae. Геном вируса представлен восемью фрагментами РНК. По данным генетического анализа, вирус гриппа, вызвавший вспышку заболевания среди людей в Мексике и США весной 2009 года, является реассортантом вирусов гриппа свиней.

Вирус передаётся от человека к человеку воздушно-капельным путём. Не исключён также и контактно-бытовой путь передачи. Инкубационный период при гриппе ВПВГА составляет обычно 2-3 дня, и вирус может выделяться в окружающую среду заболевшим 7 дней и более. Клиническая картина заболевания разнообразна – от бессимптомных форм до тяжелых пневмоний. Вирус чувствителен к озелтамивиру и занамивиру.

Вирус чувствителен к повышенным температурам и погибает при нагревании до 700С в течении 30 минут. Вирус также чувствителен к различным дезинфектантам, обладающим вирулицидным действием.

ВПВГА характеризуется высокой антигенной изменчивостью. Опасения Всемирной организации здравоохранения (ВОЗ) связаны с генетической новизной вируса и его потенциальной способностью к дальнейшей реассортации, вследствие чего возможно возникновение более агрессивных вариантов инфекции.

Эпидемиология

Наиболее известные эпидемии вызванный вирусом гриппа А (h2,N1): «испанка» - пандемия 1918-1920 годов, «русский грипп» - пандемия 1977-1978 годов, «мексиканский» или «свиной» грипп – пандемия, начавшаяся в марте-апреле 2009 года. У переболевших остаётся частичный иммунитет.

ВОЗ присвоила вирусу гриппа А (h2,N1) шестую степень угрозы (из шести). Степень угрозы по ВОЗ не характеризует патогенность вируса (то есть опасность заболевания для жизни людей), а указывает на его способность к распространению.

Определение случаев заболевания

Подтверждённый случай – заболевание, при котором имеются симптомы острого респираторного заболевания (ОРЗ) с лабораторно подтверждённой инфекцией, вызванной ВПВГА одним из следующих методов:

l      полимеразная цепная реакция (ПЦР) в режиме реального времени

l      выделение вируса в культуре клеток.

Вероятный случай – у человека имеет место ОРЗ, при этом результат ПЦР положительный на грипп типа А, но отрицательный на подтип Н1 или Н3.

Подозрительный случай – случай, при котором:

l      У человека имеется ОРЗ, и этот человек тесно контактировал с лицом с подтверждённой инфекцией, вызванной ВПВГА, в то время, когда это лицо находилось в состоянии болезни, или

l      У человека имеет место ОРЗ, и известно, что этот человек недавно контактировал с животным с подтверждённой или подозреваемой инфекцией, вызванной ВПВГА, или

l      У человека имеет место ОРЗ, и этот человек совершил поездку в район, где имеют место подтверждённые случаи ВПГА.

При поступлении из организации здравоохранения информации о подтверждённом, вероятном или подозрительном случае заболевания людей ВПГА, специалистами регионального центра гигиены и эпидемиологии проводится эпидемиологическое расследование.

Организация лабораторной диагностики

Сбор, хранение и транспортировка образцов для лабораторной диагностики

Сбор клинического материала осуществляет обученный медицинский работник лечебно-профилактического учреждения в средствах индивидуальной защиты органов дыхания (респиратор), защитных очках или щитках для защиты лица, бахилах, двойных резиновых перчатках в стерильные флаконы, пробирки, контейнеры, стерильными инструментами.

Для диагностики заболевания могут быть использованы следующие образцы:

l      мокрота

l      мазок из носа

l      мазок из носоглотки

l      аспират из носоглотки

l      смыв из носовой полости

l      содержимое эндотрахеальных трубок

По клиническим показаниям к ним могут быть добавлены:

l      трахеальный аспират

l      бронхоальвеолярный лаваж

l      биоптат легочной ткани

l      ткань легкого или трахеи, взятая post mortem.

Обследованию на высокопатогенный вирус гриппа подлежат все больные с тяжелым течением ОРЗ. Забор материала от пациентов (умерших) с подозрением на инфекцию ВПВГА проводят в лечебно-профилактическом учреждении (ЛПУ) после изоляции больного. Первичное исследование материала от больного осуществляется методами ПЦР в режиме реального времени на базе лаборатории диагностики вирусных и особо опасных инфекций ГУ «Гомельский областной Центр гигиены, эпидемиологии и общественного здоровья» (ОблЦГЭ и ОЗ).

Курьер получает в лаборатории диагностики вирусных и особо опасных инфекций ОблЦГЭ и ОЗ стерильные пробирки с физраствором и стерильные тампоны, упакованные по 10 штук. Пробирки и тампоны хранятся в  приемном покое УГОТКБ, годны для использования 7 дней. В приёмном покое хранятся также одноразовые стерильные пластиковые сухие пробирки объёмом 50 мл для сбора биологического материала (мокрота, содержимое эндотрахеальных трубок, ткань лёгкого и др.).

Оптимальные сроки забора

l      до начала этиотропной терапии

l      мазок из носовой полости, зева - не позднее 5 дня от начала заболевания (лучше первые 3 дня)

l      парные сыворотки крови 1-я сыворотка не позднее 3-5 дня заболевания.2-я сыворотка через 14 дней

l      секционный материал - в день смерти больного

Техника забора клинического материала

Венозная кровь

Для серологического исследования забираются парные сыворотки крови. Первую пробу крови берут в первые 3-4 дня заболевания (или в первый день обращения за медицинской помощью). Кровь забирается в чистую сухую пробирку шприцем из вены в количестве 3-5 мл у взрослых.

Первичная обработка крови проводится в клинико-диагностической лаборатории УГОТКБ. Венозная кровь, отстаивается 30 минут при комнатной температуре. При помощи стеклянной палочки отделяют столбик сгустка от стенок пробирки. Пробирку центрифугируют при 1500 об/мин 10 минут. Полученную сыворотку отсасывают автоматическим дозатором с одноразовым наконечником. На каждую сыворотку используется отдельный наконечник. Сыворотка не должна быть гемолизированная, хилезная, с признаками бактериального пророста.

Первую пробу сыворотки хранят при температуре минус 200 С до получения второй сыворотки крови. Повторное оттаивание – замораживание не допускается.

Вторую пробу берут через 14 дней после начала заболевания. Обе пробы одновременно отправляют для исследования в лабораторию диагностики вирусных и особо опасных инфекций в течение 24 часов после забора второй сыворотки.

Одиночные сыворотки лаборатория диагностики вирусных и особо опасных инфекций не принимает, т.к. диагностика осуществляется на основании 4-х кратного увеличения титра антител во второй сыворотке по сравнению с первой.

Мазок из полости носа

Мазок из полости носа забирают сухими стерильными ватными тампонами. Перед взятием материала полость носа необходимо очистить от слизи, лейкоцитов, слущенных клеток эпителия.

Тампон ввести легким движением по наружной стенке носа на глубину 2-3 см до нижней раковины. Затем тампон слегка опустить книзу, ввести в нижний носовой ход под нижнюю носовую раковину, сделать вращательное движение и удалить вдоль наружной стенки носа. Мазок берётся из обеих полостей носа. Тампоны погрузить в стерильную пробирку с 3 мл транспортной среды (фосфатно-солевой буфер или физраствор), отломать концы палочек и плотно закрыть пробкой.

Материал в течение 1 - 4 часов доставляется в лабораторию.

Мазки должны быть забраны таким образом, чтобы в них содержались клетки, имеющие диагностическое значение - цилиндрический эпителий из глубоких отделов носа, в котором размножаются вирусы. Мазки, содержащие клетки плоского и переходного эпителия из наружных отделов носа не информативны и исследованию не подлежат.

Мазок из ротоглотки

Мазки берут сухими стерильными ватными тампонами вращательными движениями с поверхности миндалин, нёбных дужек и задней стенки ротоглотки.  Тампоны погрузить в стерильную пробирку с 3 мл транспортной среды (фосфатно-солевой буфер или физраствор), отломать концы палочек и закрыть пробкой.

Секционный материал

Кусочки ткани легких берут асептически. Объем проб – около 1-2 см?. Секционный материал помещают в стерильную посуду и транспортируют в термоконтейнере в течение 24 часов.

Хранение

l      Все виды собранного биологического материала должны храниться в больнице не более суток при температуре 2-8°С

l       Сыворотка хранится в замороженном состоянии

Транспортировка

Каждая проба представляется с сопроводительным документом. Направление на исследование материала на ВПГВА методом ПЦР представлено в Приложении 1. Материал взятый post mortem представляется с направлением по форме Приложения 2. Для исследования на грипп и другие ОРВИ (парагрипп, аденовирусная инфекция, РС-инфекция) методом РИФ с направлением на обычном бланке для исследования биологического материала.

Материал доставляется в лабораторию в специальном термоконтейнере с охлаждающими элементами. При необходимости используются специальные среды для транспортировки вирусосодержащего материала (выдает лаборатория диагностики вирусных и особо опасных инфекций ОблЦГЭ и ОЗ).

Все транспортируемые образцы должны быть упакованы в тройную упаковку, содержащую три упаковочных слоя. Упаковка должна быть выполнена с учётом предотвращения любой утечки содержимого, выдерживать удары и нагрузки, имеющие место при транспортировке. Между первичной ёмкостью и вторичной упаковкой должен находиться мягкий абсорбирующий материал, в количестве достаточном для впитывания всего содержимого первичных ёмкостей. При транспортировке нескольких клинических образцов – каждый упаковывается в первичную упаковку, исключается любой контакт между ними.

Методы лабораторной диагностики

Иммунофлюоресцентный анализ

Позволяет обнаружить антиген вируса гриппа в клетках цилиндрического эпителия дыхательного тракта больного за счёт взаимодействия антигенов со специфическими противовирусными антителами. Вирус и инфицированная клетка очень неустойчивы, забор материала нужно проводить как можно быстрее после появления клинических симптомов, т.к. число инфицированных клеток уменьшается по ходу болезни. Вследствие мутаций вновь появившиеся высокопатогенные штаммы вируса гриппа свиней изменили свои антигенные свойства, вследствие чего иммунофлюоресценция может быть ложноотрицательна. Поэтому метод не применяется для диагностики ВПВГА, а используется для диагностики гриппа А (кроме свиного), гриппа В, парагриппа, аденовирусной и респираторно-синтициальной инфекции.

Серологические тесты

Это методы определения специфических антител в парных сыворотках крови с целью ретроспективного подтверждения диагноза. Серологический анализ позволяет определить заболевание, вызванное  одним из 6 подтипов гриппа А, включая свиной и птичий, гриппом В.

Полимеразная цепная реакция

Определяют РНК вируса в диагностическом материале. Результаты получают через 24 часа.  При исследовании методом ПЦР анализ проводится в два этапа: I этап – обнаружение вирусов гриппа А, II этап – идентификация субтипов h2N1 и h4N2.

Выделение вируса в культуре клеток или куриных эмбрионах

Метод позволяет не только идентифицировать возбудителя, но и изучить его антигенные, фенотипические, генетические свойства, определить чувствительность к лекарственным препаратам. Это самый длительный метод - результаты через 2-10 дней. Материал для исследования является отделяемое из глубоких отделов носовой полости, зева, секционные ткани. Для транспортировки используют специальные среды. Исследование проводится в г. Минске в лабораториях Национального Центра Гриппа.

Лаборатория диагностики вирусных и особо опасных инфекций ГУ «Гомельский областной центр гигиены, эпидемиологии и общественного здоровья» осуществляет диагностику широкого спектра вирусных, бактериальных, протозойных инфекций, гельминтозов. Правила забора и доставки биологического материала представлены в Приложении 3.

Литература

 

1. Постановление МЗ РБ № 48 от 01.10.2000 г. «О мероприятиях по профилактике гриппа и других острых респираторных вирусных инфекций»
2. Инструкция по применению «Лабораторная диагностика заболевания людей высокопатогенным гриппом» от 08.05.2009 г. № 049-05
3. Руководство «Порядок учёта, хранения, передачи и транспортировки микроорганизмов 1-4 групп патогенности» от 30.12.2002 г. №11-7-13-2002
4. СП 1.2.011-94 «Безопасность работы с микроорганизмами 1, 2 группы патогенности»
5. Инструктивно-методическое письмо «Правила забора и доставки биологического материала в лабораторию диагностики вирусных и особо опасных инфекций ГУ «Гомельский областной центр гигиены, эпидемиологии и общественного здоровья» № 8.7.2./40 от 29.05.2009 г.

 

 

 

 

Приложение 1

 

Направление № ______________

для лабораторного исследования биологического образца от больного ОРИ.

ФИО
Год рождения, возраст
Пол
Профессия
Адрес и телефон
Дата появления симптомов
Дата забора образца
Диагноз
Симптомы заболевания	есть	Нет
Температура
Боли в горле
Одышка
Кашель
Миалгия
Головная боль
Конъюнктивит
Насморк
Диарея
Тошнота, рвота
Судороги
Нарушение сознания
Боли в суставах
Кровотечение из носа
Другие
Анамнез	да	нет
Вакцинирован ли?
Применение противогриппозных препаратов (какие)
Есть ли сопутствующие заболевания и/или осложнения (если да, то описать)
Материал для исследования
Мазки из носа
Мазки из носоглотки
Назофарингеальный аспират
Мокрота
Парные сыворотки
Адрес учреждения, направляющего образец
Название учреждения
ФИО врача
Телефон
Факс	-
e-mail	-
Образец направлен ГУ «Гомельский областной центр гигиены, эпидемиологии и общественного здоровья», г.Гомель, ул. Моисеенко , 49
ГУ РНПЦ эпидемиологии и микробиологии, НЦГ, Минск, ул Филимонова, 23, к.110, тел. 237 62 95, e-mail: Этот адрес электронной почты защищён от спам-ботов. У вас должен быть включен JavaScript для просмотра.

 

 

Приложение 2

Направление № _________

для лабораторного исследования биологических образцов,

взятых post mortem

 

ФИО
Год рождения
Пол
Дата заболевания
Дата поступления в стационар
Дата смерти
Дата забора образца
Клинический диагноз
Сопутствующие, фоновые заболевания
Предварительный патологоанатомический диагноз
Анамнез	да	нет
Вакцинирован ли?
Применение противогриппозных препаратов (какие)
Материал для исследования
Материалы, взятые post mortem
Адрес учреждения, направляющего образец
Название учреждения
ФИО врача
Телефон
Факс
e-mail

 

 

 

 

 

Приложение 3

 

Грипп и другие ОРВИ (парагрипп, аденовирусная инфекция, РС – инфекция)
Метод исследования	Материал для исследования	Сроки взятия материала
РИФ, ПЦР	мазок из носовой полости	не позднее 5 дня от начала заболевания
	секционный материал	в день смерти больного
РТГА	парные сыворотки крови	1-я сыворотка не позднее 3-5 дня заболевания.2-я сыворотка через 14 дней.
Метод клеточных культур	секционный материал	в день смерти больного
	мазок из носовой полости, зева	не позднее 5 дня от начала заболевания

 

TORCH - инфекции (токсоплазмоз, краснуха, цитомегаловирусная инфекция, герпетическая инфекция)
Метод исследования	Материал для исследования	Сроки взятия материала
ИФА	сыворотка крови	При подозрении на перечисленные инфекции ! При подозрении на краснуху: у беременных забирается незамедлительно, у остальных больных кровь следует забирать на 4-7 день появления сыпи.
РИФ	урогенитальные мазки	При подозрении на герпетическую инфекцию
ПЦР	урогенитальные соскобы	При подозрении на герпетическую инфекцию, цитомегаловирусную инфекцию.

 

Заболевания передающиеся половым путём (урогенитальный хламидиоз, уреаплазмоз, микоплазмоз, гарднереллёз, трихомониаз, папилломавирусная инфекция)
Метод исследования	Материал для исследования	Сроки взятия материала
РИФ	урогенитальные мазки	При подозрении на уреаплазмоз, микоплазмоз, хламидиоз
ПЦР	урогенитальные соскобы	При подозрении на ЗППП

 

Вирусные инфекции (корь)
Метод исследования	Материал для исследования	Сроки взятия материала
ИФА	сыворотка крови	4-7 дни от появления сыпи

 

 

Вирусные инфекции (эпидпаротит)
Метод исследования	Материал для исследования	Сроки взятия материала
ИФА	парные сыворотки крови	1-я сыворотка: 3 день заболевания. 2-я сыворотка: через 14 дней.

 

Вирусные инфекции (клещевой энцефалит)
Метод исследования	Материал для исследования	Сроки взятия материала
ИФА	сыворотка крови	Первая неделя заболевания
РСК	парные сыворотки крови	1-я сыворотка: 3 день заболевания. 2-я сыворотка: через 14 дней.

 

Вирусные гепатиты
Метод исследования	Материал для исследования	Сроки взятия материала
ИФА	сыворотка крови	При подозрении на вирусные гепатиты, обследование контингентов групп риска с целью профилактики

 

Ротавирусная инфекция
Метод исследования	Материал для исследования	Сроки взятия материала
ИФА	фекалии	1-5 дни болезни

 

Энтеровирусная инфекция
Метод исследования	Материал для исследования	Сроки взятия материала
ИФА	сыворотка крови	3-й день заболевания
	ликвор	3-й день заболевания
	фекалии	с 1-го дня болезни
	носоглоточные смывы	с 1-го дня болезни
РИФ	ликвор	3-й день заболевания
	сыворотка крови	3-й день заболевания
ПЦР	ликвор	3-й день заболевания
	фекалии	с 1-го дня болезни
	носоглоточные смывы	с 1-го дня болезни
Метод клеточных культур	ликвор	3-й день заболевания
	фекалии	с 1-го дня болезни
	носоглоточные смывы	с 1-го дня болезни

 

 

 

Полиомиелит
Метод исследования	Материал для исследования	Сроки взятия материала
Метод клеточных культур	фекалии	От больных c подозрением на полиомиелит и в случаях других ОВП в первые 3 суток 2 пробы по 2 флакона каждая с интервалом 24-48 часов
		От контактных в возрасте до 5 лет 1 проба в 2 флакона

 

Гельминтозы (цистицеркоз, описторхоз, эхинококкоз, трихинеллёз, токсокароз)
Метод исследования	Материал для исследования	Сроки взятия материала
ИФА	сыворотка крови	В начале заболевания

 

Бактериальные инфекции (дифтерия, столбняк, коклюш, паракоклюш, сальмонеллёз, шигеллёз, сыпной тиф, иерсиниозы, псевдотуберкулёз, брюшной тиф, паратифы А и В, менингококковая инфекция)
Метод исследования	Материал для исследования	Сроки взятия материала
РПГА, РА, РНГА, РСК	парные сыворотки крови	1-я сыворотка: не позднее 3-5 дня заболевания. 2-я сыворотка: через 7-10 дней.

 

Бактериальные инфекции (Лайм-боррелиоз)
Метод исследования	Материал для исследования	Сроки взятия материала
РНИФ	парные сыворотки крови	1 сыворотка:10 дней после инфицирования 2 сыворотка: 3-6 недель после положительной первой сыворотки

www.gotkb.by

---

Смотрите также

• 
  Журнал клиническая нефрология официальный сайт
• 
  Журнал лунных дней на 1970
• Журнал сварочных работ 17 граф
• 
  Как сделать звездочки из журналов
• 
  Электронный журнал ломоносовская школа интек
• 
  Журнал введенская сторона официальный сайт
• 
  Журнал мудрый совенок для детей
• 
  Журнал муниципальная академия официальный сайт
• 
  Пуловер оверсайз спицами из журналов
• 
  Вестник мгхпа журнал официальный сайт
• 
  Юлия козлюк в журнале kuzmin