Это интересно
- ОКД
- ЗКС
- ИПО
- КНПВ
- Мондиоринг
- Большой ринг
- Французский ринг
- Аджилити
- Фризби
Опрос
Полезные ссылки
РКФ
Все о дрессировке собак
Стрижка собак в Коломне
Поиск по сайту
Журнал акушерство гинекология генетика
Акушерство и Гинекология » Генетические аспекты пролапса гениталий
1. Смольнова Т.Ю. Клинико-патогенетические аспекты опущения и выпадения внутренних половых органов и патологии структур тазового комплекса у женщин при дисплазии соединительной ткани: дисс. … д-ра мед. наук. М.; 2009. 291с.
2. Bump R.C., Mattiasson A., Bø K., Brubaker L.P., DeLancey J.O., Klarskov P. et al. The standartization of terminology of female genital prolapse and pelvic floor disfunction. Am. J. Obstet. Gynecol. 1996; 175(1): 10-7.
3. Connell K.A., Guess M.K., Chen H., Andikyan V., Bercik R., Taylor H.S. HOXA11 is critical for development and maintenance of uterosacral ligaments and deficient in pelvic prolapse. J. Clin. Invest. 2008;118(3): 1050-5.
4. Адамян Л.В., Кулаков В.И., Киселев С.В., Сашин Б.Е. Лапаро-вагинальный доступ в хирургическом лечении опущения стенок влагалища, несостоятельности мышц тазового дна и недержания мочи при напряжении у женщин детородного возраста. В кн.: Эндоскопия в диагностике и лечении патологии матки (с курсом эндоскопии): Международный конгресс. М.; 1997: 191-3.
5. Краснопольский В.И., Иоселиани М.Н., Рижинашвили И.Д., Слободянюк А.И. Современные аспекты хирургического лечения опущения и выпадения внутренних половых органов женщины. Акушерство и гинекология. 1990; 8: 58-60.
6. Samuelsson E.C., Victor F.T., Tibblin G., Svardsudd K.F. Signs of genital prolapsed in a Swedish population of women 20 to 59 years of age and possible related factors. Am. J. Obstet. Gynecol. 1999; 180(2, Pt l): 299-305.
7. Deeb M.E., Awwad J., Yeretzian J.S., Kaspar H.G. Prevalence of reproductive tract infections, genital prolapse, and obesity in a rural community in Lebanon. Bull. World Health Organ. 2003; 81(9): 639-45.
8. Mawajdeh S.M., Al-Qutob R., Schmidt A. Measuring reproductive morbidity: a community-based approach, Jordan. Health Care Women Int. 2003; 24(7): 635-49.
9. Scherf C., Morison L., Fiander A., Ekpo G., Walraven G. Epidemiology of pelvic organ prolapse in rural Gambia, West Africa. BJOG. 2002; 109(4): 431-6.
10. Sewell C.A., Chang E., Sultana C.J. Prevalence of genital prolapse in 3 ethnic groups. J. Reprod. Med. 2007; 52(9): 769-73.
11. Gomman H.M., Nossier S.A., Fotohi E.M., Kholeif A.E. Prevalence and factors associated with genital prolapse: a hospital-based study in Alexandria (Part I). J. Egypt. Public Health Assoc. 2001; 76(5-6): 313-35.
12. Carley M.E., Turner R.J., Scott D.E., Alexander J.M. Obstetric history in women with surgically corrected adult urinary incontinence or pelvic organ prolapse. J. Am. Assoc. Gynecol. Laparosc. 1999; 6(1): 85-9.
13. Pierce C.B., Hallock J.L., Blomquist J.L., Handa V.L. Longitudinal changes in pelvic organ support among parous women. Female Pelvic Med. Reconstr. Surg. 2012; 18(4): 227-32.
14. Ashton-Miller J.A., DeLancey J.O. Functional anatomy of the female pelvic floor. Ann. N. Y. Acad. Sci. 2007; 1101: 266-96.
15. Смольнова Т.Ю., Адамян Л.В., Сидоров В.В. Особенности микроциркуляции при опущении и выпадении половых органов у женщин репродуктивного возраста. Акушерство и гинекология. 2007; 1: 39-44.
16. Boreham M.K., Wai C.Y., Miller R.T., Schaffer J.I., Word R.A. Morphometric properties of the posterior vaginal wall in women with pelvic organ prolapse. Am. J. Obstet. Gynecol. 2002; 187(6): 1501-8.
17. Mladenović-Segedi L., Segedi D. Most important etiologic factors in the development of genital prolapsed. Srp. Arh. Celok. Lek. 2010; 138(5-6): 315-8.
18. Handa V.L., Blomquist J.L., McDermott K.C., Friedman S., Muñoz A. Pelvic floor disorders after vaginal birth: effect of episiotomy, perineal laceration, and operative birth. Obstet. Gynecol. 2012; 119(2, Pt 1): 233-9.
19. Aytan H., Tok E.C., Ertunc D., Yasa O. The effect of episiotomy on pelvic organ prolapse assessed by pelvic organ prolapse quantification system. Eur. J. Obstet. Gynecol. Reprod. Biol. 2014; 173(1): 34-7.
20. Araco F., Gravante G., Sorge R., De Vita D., Piccione E. Risk evaluation of smoking and age on the occurrence of postoperative erosions after transvaginal mesh repair for pelvic organ prolapses. Int. Urogynecol. J. Pelvic Floor. Dysfunct. 2008; 19(4): 473-9.
21. Nikolova G., Lee H., Berkovitz S., Nelson S., Sinsheimer J., Vilain E., Rodríguez L.V. Sequence variant in the laminin γ1 (LAMC1) gene associated with familial pelvic organ prolapsed. Hum. Genet. 2007; 120(6): 847-56.
22. Смольнова Т.Ю. Патогенетическое обоснование выбора метода хирургической коррекции пролапса гениталий у женщин репродуктивного возраста: дисс. … канд. мед. наук. М.; 1999. 165с.
23. Смольнова Т.Ю., Адамян Л.В. Клинико-патогенетические аспекты опущения и выпадения внутренних половых органов при недифференцированных формах дисплазии соединительной ткани. Кубанский научный медицинский вестник. 2009; 6: 69-73.
24. Lince S.L., van Kempen L.C., Vierhout M.E., Kluivers K.B. A systematic review of clinical studies on hereditary factors in pelvic organ prolapse. Int. Urogynecol. J. 2012; 23(10): 1327-36.
25. Buchsbaum G.M., Duecy E.E., Kerr L.A., Huang L.S., Guzick D.S. Urinary incontinence in nulliparous women and their parous sisters. Obstet. Gynecol. 2005; 106(6): 1253-8.
26. Смольнова Т.Ю., Адамян Л.В. Фенотип и его взаимосвязь с клиническими проявлениями у женщин, определяемыми функциональными и патофизиологическими особенностями сердечно-сосудистой системы при дисплазии соединительной ткани. Справочник врача общей практики. 2014; 10: 52-8.
27. Смольнова Т.Ю., Буянова С.Н., Титченко Л.И., Гришин В.Л., Савельев С.В., Яковлева Н.И. Пролапс митрального клапана - как один из фенотипических маркеров генерализованной дисплазии соединительной ткани у женщин с выпадением половых органов. Российские медицинские вести. 2001; 6(3): 41-6.
28. Schwarze U., Schievink W., Petty E., Jaff M.R., Babovic-Vuksanovic D., Cherry K.J. et al. Haploinsufficiency for one COL3A1 allele of type III procollagen results in a phenotype similar to the vascular form of Ehlers-Danlos syndrome, Ehlers-Danlos syndrome type IV. Am. J. Hum. Genet. 2001; 69(5): 989-1001.
29. Carley M.E., Schaffer J. Urinary incontinence and pelvic organ prolapse in women with Marfan or Ehlers Danlos syndrome. Am. J. Obstet. Gynecol. 2000; 182(5): 1021-3.
30. Комитет экспертов Всероссийского научного общества кардиологов. Наследственные нарушения соединительной ткани. Российские рекомендации. Кардиоваскулярная терапия и профилактика. 2009; 8(6, приложение 5): 2-24.
31. Ящук А.Г. Медико-генетическое прогнозирование десценции тазового дна у женщин уральского региона. Казанский медицинский журнал. 2008; 89(2): 169-73.
32. Ward R.M., Velez Edwards D.R., Edwards T., Giri A., Jerome R.N., Wu J.M. Genetic epidemiology of pelvic organ prolapse: a systematic review. Am. J. Obstet. Gynecol. 2014; 211(4): 326-35.
33. Rodrigues A.M., Girão M.J., da Silva I.D., Sartori M.G., Martins Kde F., Castro Rde A. COL1A1 Sp1-binding site polymorphism as a risk factor for genital prolapse. Int. Urogynecol. J. Pelvic Floor Dysfunct. 2008; 19(11): 1471-5.
34. Ильина И.Ю., Доброхотова Ю.Э., Жданова М.С. Влияние дисплазии соединительной ткани на развитие пролапса гениталий. Российский вестник акушера-гинеколога. 2009; 9(4): 15-8.
35. Громова О.А., Торшин И.Ю. Дисплазия соединительной ткани, клеточная биология и молекулярные механизмы воздействия магния. Русский медицинский журнал. 2008; 16(4): 230-9.
36. Drewes P.G., Yanagisawa H., Starcher B., Hornstra I., Csiszar K., Marinis S.I. et al. Pelvic organ prolapse in fibulin-5 knockout mice: pregnancy-induced changes in elastic fiber homeostasis in mouse vagina. Am. J. Pathol. 2007; 170(2): 578-89.
37. Wieslander C.K., Marinis S.I., Keller P., Boreham M.K., Drewes P.G., Schaffer J.I., Word R.A. Elastic fiber homeostasis in vaginal tissues from women with pelvic organ prolapse. Int. Urogynecol. J. Pelvic Floor Dysfunct. 2006; 17(Suppl. 3): S407-8. (Abstracts from the 27th Annual American Urogynecologic Society Scientific Meeting. 19-21 October 19-21, 2006. Palm Springs, California, USA)
38. Zacchigna L., Vecchione C., Notte A., Cordenonsi M., Dupont S., Maretto S. et al. Emilin1 links TGF-beta maturation to blood pressure homeostasis. Cell. 2006; 124(5): 929-42.
39. Kobak W., Lu J., Hardart A., Zhang C., Stanczyk F.Z., Felix J.C. Expression of lysyl oxidase and transforming growth factor beta2 in women with severe pelvic organ prolapse. J. Reprod. Med. 2005; 50(11): 827-31.
40. Takacs P., Nassiri M., Viciana A., Candiotti K., Fornoni A., Medina C.A. Fibulin-5 expression is decreased in women with anterior vaginal wall prolapse. Int. Urogynecol. J. Pelvic Floor Dysfunct. 2009; 20(2): 207-11.
41. Zhou Y., Ling O., Bo L. Expression and significance of lysyl oxidase-like 1 and fibulin-5 in the cardinal ligament tissue of patients with pelvic floor dysfunction. J. Biomed. Res. 2013; 27(1): 23-8.
42. Jian J., Zheng Z., Zhang K., Rackohn T.M., Hsu C., Levin A. et al. Fibromodulin promoted in vitro and in vivo angiogenesis. Biochem. Biophys. Res. Commun. 2013; 436(3): 530-5.
43. Klutke J., Ji Q., Campeau J., Starcher B., Felix J.C., Stanczyk F.Z., Klutke C. Decreased endopelvic fascia elastin content in uterine prolapsed. Acta Obstet. Gynecol. Scand. 2008; 87(1): 111-5.
44. Wang X., Li Y., Chen J., Guo X., Guan H., Li C. Differential expression profiling of matrix metalloproteinases and tissue inhibitors of metalloproteinases in females with or without pelvic organ prolapsed. Mol. Med. Rep. 2014; 10(4): 2004-8.
45. Ferrari M.M., Rossi G., Biondi M.L., Viganò P., Dell'utri C., Meschia M. Type I collagen and matrix metalloproteinase 1, 3 and 9 gene polymorphisms in the predisposition to pelvic organ prolapse. Arch. Gynecol. Obstet. 2012; 285(6): 1581-6.
46. Wu J.M., Visco A.G., Grass E.A., Craig D.M., Fulton R.G., Haynes C. et al. Matrix metalloproteinase-9 genetic polymorphisms and the risk for advanced pelvic organ prolapse. Obstet. Gynecol. 2012; 120(3): 587-93.
47. Yılmaz N., Ozaksit G., Terzi K.Y., Yılmaz S., Budak B., Aksakal O., Şahin F.I. HOXA11 and MMP2 gene expression in uterosacral ligaments of women with pelvic organ prolapse. J. Turk. Ger. Gynecol. Assoc. 2014; 15(2): 104-8.
48. Адамян Л.В., Смольнова Т.Ю., Банин В.В. Роль «тканевого фенотипа» в развитии гинекологических заболеваний. Проблемы репродукции. 2007; 13(4): 6-11.
49. Boreham M.K., Wai C.Y., Miller R.T., Schaffer J.I., Word R.A. Morphometric analysis of smooth muscle in the anterior vaginal wall of women with pelvic organ prolapse. Am. J. Obstet. Gynecol. 2002; 187(1): 56-63.
50. Corton M.M. Anatomy of pelvic floor dysfunction. Obstet. Gynecol. Clin North Am. 2009; 36(3): 401-19.
51. Boreham M.K., Miller R.T., Schaffer J.I., Word R.A. Smooth muscle myosin heavy chain and caldesmon expression in the anterior vaginal wall of women with and without pelvic organ prolapse. Am. J. Obstet. Gynecol. 2001; 185(4): 944-52.
52. Visco A.G., Yuan L. Differential gene expression in pubococcygeus muscle from patients with pelvic organ prolapse. Am. J. Obstet. Gynecol. 2003; 189(1): 102-12.
53. Athanasiou S., Lymberopoulos E., Kanellopoulou S., Rodolakis A., Vlachos G., Antsaklis A. Proteomic analysis of pubocervical fascia in women with and without pelvic organ prolapse and urodynamic stress incontinence. Int. Urogynecol. J. 2010; 21(11): 1377-84.
Поступила 18.03.2016
Принята в печать 25.03.2016
Акушерство и Гинекология » Генетические факторы риска акушерских осложнений при самопроизвольной беременности и беременности после вспомогательных репродуктивных технологий
Генетические факторы риска акушерских осложнений при самопроизвольной беременности и беременности после вспомогательных репродуктивных технологий
Александрова Н.В., Донников А.Е., Баев О.Р., Сухих Г.Т.
ФГБУ Научный центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. академика В.И. Кулакова Минздравсоцразвития России, МоскваЦель исследования. Изучить роль генных полиморфизмов, ассоциированных с формированием системы мать-плацента-плод, в развитии акушерских осложнений после вспомогательных репродуктивных технологий (ВРТ).Материал и методы. В исследуемую группу вошли 167 беременных после применения ВРТ (средний возраст 34,4±4,3 года). Контрольную группу составили 145 женщин с самопроизвольной одноплодной беременностью (средний возраст 29,9±4,7 лет). Изучался полиморфизм генов цитокинов, участвующих в процессах имплантации и плацентации (IL-10, IL-6, IL-6R), регулирующих формирование сосудистой сети плаценты (VEGFA), генов, контролирующих метаболические функции плаценты (PPARG, IGF II), а также полиморфизм генов системы свертывания крови (F2, F5, FGB, ITGA2, ITGB3, SERPINE1) и ферментов фолатного цикла (MTHFR, MTR, MTRR). Результаты исследования. Полиморфизмы генов (IL-10 -592 А/С, VEGFA -2578 A>C, SERPINE1 -675 5G>4G, IL6 -174 C>G, VEGFA -634 G>C, PPARG C>G [Pro12Ala]) ассоциированы с развитием акушерских осложнений независимо от способа достижения беременности, что отражает их вовлеченность в различные звенья патогенеза.
Литература
1. Стрижаков А.Н. и др. Роль ангиогенных факторов роста в прогнозировании плацентарной недостаточности // Вопр. гин., акуш. и перинатол. – 2009. – Т. 8, № 4. – С. 5–11.2. Anteby Y., Greenfield C., Natanson-Yaron S. Vascular endothelial growth factor, epidermal growth factor and fibroblast growth factor-4 and -10 stimulate trophoblast plasminogen activator system and metalloproteinase-9 // Mol. Hum. Reprod. – 2004. – Vol. 10. – P. 229–223.3. Banyasz I., Szabo S., Bokodi G. et al. Genetic polymorphisms of vascular endothelial growth factor in severe pre-eclampsia // Mol. Hum. Reprod. – 2006. – Vol. 12. – P. 233–236.4. Carmeliet P., Ferreira V., Breier G. et al. Abnormal blood vessel development and lethality in embryos lacking a single VEGFA allele // Nature. – 1996. – Vol. 380. – P. 435–439.5. Constancia M., Hemberger M., Hughes J. et al. Placental-specific IGF2 is a major modulator of placental and fetal growth. // Nature. – 2002. – Vol. 417. – P. 945–948.6. Coulam C.B., Jeyendran R.S. Vascular endothelial growth factor gene polymorphisms and recurrent pregnancy loss // Am. J. Reprod. Immunol. – 2008. – Vol. 59. – P. 301–305.7. Ferrara N., Carver-Moore K., Chen H. et al. Heterozygous embryonic lethality induced by targeted inactivation of the VEGFA gene // Nature. – 1996. – Vol. 380. – P. 439–442.8. Ghezzi F., Cohen J., Tolosa J.E. et al. Microbial invasion of the amniotic cavity is associated with increased concentrations of amniotic fluid interleukin-6 soluble receptor // Am. J. Obstet. Gynecol. – 1996. – Vol. 174. – P. 402.9. Giquel C., Rossignol S., Cabrol S. et al. Epimutation of the telomeric imprinting center region on chromosome 11p15 in Silver-Russell syndrome // Nat. Genet. – 2005. – Vol. 37. – P. 1003–1007.10. Hartel C., Finas D., Ahrens P. et al. Interleukin 6 -174 G/C promoter polymorphism and pregnancy complications: Results of a prospective cohort study in 1626 pregnant women // Am. J. Reprod. Immunol. – 2008. – Vol. 59, N 4. – P. 347–351.11. Kimatrai M., Blanco O., Munoz-Fernandez R. et al. Contractile activity of human decidual stromal cells. II. Effect of interleukin-10 // J. Clin. Endocrinol. Metab. – 2005. – Vol. 90. – P. 6126–6130.12. Meirhaeghe A., Boreham C.A.G., Murray L.J. et al. A possible role for the PPARG Pro12Ala polymorphism in preterm birth // Diabetes. – 2007. – Vol. 56. – P. 494–498.13. Miyaki K., Murata M., Kikuchi H. et al. Assessment of tailor-made prevention of atherosclerosis with folic acid supplementation: randomized, double-blind, placebo-controlled trials in each MTHFR C677T genotype // J. Hum. Genet. – 2005. – Vol. 50, N 5. – P. 241–248.14. Murtaugh M.A., Curtin K., Sweeney C. et al. Dietary intake of folate and co-factors in folate metabolism, MTHFR polymorphisms, and reduced rectal cancer // Cancer Causes Control. – 2007. – Vol. 18, N 2. – P. 153–163.15. Nordengren J., Pilka R., Noskova V. et al. Differential localization and expression of urokinase plasminogen activator(uPA), its receptor(uPAR), and its inhibitor (PAI-1) mRNA and protein in endometrial tissue during the menstrual cycle // Mol. Hum. Reprod. – 2004. – Vol. 10. – P. 655–663.16. Papazoglou D., Galazios G., Papatheodorou K. et al. Vascular endothelial growth factor gene polymorphisms and idiopathic recurrent pregnancy loss // Fertil. and Steril. – 2005. – Vol. 83. – P. 959–963.17. Randhawa R., Cohen P. The role of the insulin-like growth factor system in prenatal growth // Mol. Genet. Metab. – 2005. – Vol. 86. – P. 84–90.18. Schneider B.P., Radovich M., Sledge G.W. et al. Association of polymorphisms of angiogenesis genes with breast cancer // Breast Cancer Res. Treat. – 2008. – Vol. 111. – P. 157–163.19. Shim J.Y., Jun J.K., Jung B.K. et al. Vascular endothelial growth factor gene +936 C/T polymorphism is associated with preeclampsia in Korean women // Am. J. Obstet. Gynecol. – 2007. – Vol. 197. – P. 271; e 1–4.20. Sparago A., Cerrato F., Vernucci M. et al. Microdeletions in the human h29 DMR result in loss of IGF2 imprinting and Beckwith-Wiedemann syndrome // Nat. Genet. – 2004. – Vol. 36. – P. 958–996.21. Velez D.R., Menon R., Thorsen P. et al. Ethnic differences in interleukin 6 (IL-6) and IL6 receptor genes in spontaneous preterm birth and effects on amniotic fluid protein levels // Ann. Hum. Genet. – 2007. – Vol. 71. – P. 586–600.
Об авторах / Для корреспонденции
Александрова Наталья Владимировна, канд. мед. наук докторант ФГБУ НЦ АГиП им. академика В.И. Кулакова Минздравсоцразвития РоссииАдрес:117997, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4Телефон: 8 (495) 438-25-38 E-mail: [email protected]
Похожие статьи
aig-journal.ru
Акушерство и Гинекология » Генетические факторы в развитии привычного невынашивания беременности: обзор данных мета-анализов
1. Сидельникова В.М., Сухих Г.Т. Невынашивание беременности. М.: ГЭОТАР-Медиа; 2010. 534с.
2. Радзинский В.Е., Соловьева А.В., Оленев А.С. Невынашивание беременности. Что в перспективе? Репродуктивная медицина. 2014; 3-4: 8-10.
3. Rull K., Nagirnaja L., Laan M. Genetics of recurrent miscarriage: challenges, current knowledge, future directions. Front. Genet. 2012; 3: 34.
4. Sergi C., Al Jishi T., Walker M. Factor V Leiden mutation in women with early recurrent pregnancy loss: a meta-analysis and systematic review of the causal association. Arch. Gynecol. Obstet. 2015; 291(3): 671-9. doi: 10.1007/s00404-014-3443-x.
5. Kolte A.M., Nielsen H.S., Steffensen R., Crespi B., Christiansen O.B. Inheritance of the 8.1 ancestral haplotype in recurrent pregnancy loss. Evol. Med. Public Health. 2015; (1): 325-31. doi: 10.1093/emph/eov031.
6. Schulze R. Meta-analysis: a comparision of approaches. Cambridge, MA: Hogrefe & Huber; 2004. 242p.
7. Nair R.R., Khanna A., Singh K. Association of GSTT1 and GSTM1 polymorphisms with early pregnancy loss in an Indian population and a meta-analysis. Reprod. Biomed. Online. 2013; 26(4): 313-22. doi: 10.1016/j.rbmo.2012.12.004.
8. Ren A., Wang J. Methylenetetrahydrofolate reductase C677T polymorphism and the risk of unexplained recurrent pregnancy loss: a meta-analysis. Fertil. Steril. 2006; 86(6): 1716-22. doi: 10.1016/j.fertnstert.2006.05.052.
9. Cao Y., Xu J., Zhang Z., Huang X., Zhang A., Wang J. et al. Association study between methylenetetrahydrofolate reductase polymorphisms and unexplained recurrent pregnancy loss: a meta-analysis. Gene. 2013; 514(2): 105-11. doi: 10.1016/j.gene.2012.10.091.
10. Chen H., Yang X., Lu M. Methylenetetrahydrofolate reductase gene polymorphisms and recurrent pregnancy loss in China: a systematic review and meta-analysis. Arch. Gynecol. Obstet. 2016; 293(2): 283-90. doi: 10.1007/s00404-015-3894-8.
11. Nair R.R., Khanna A., Singh R., Singh K. Association of maternal and fetal MTHFR A1298C polymorphism with the risk of pregnancy loss: a study of an Indian population and a meta-analysis. Fertil. Steril. 2013; 99(5): 1311-8. e4. doi: 10.1016/j.fertnstert.2012.12.027.
12. Gao H., Tao F.B. Prothrombin G20210A mutation is associated with recurrent pregnancy loss: a systematic review and meta-analysis update. Thromb. Res. 2015; 135(2): 339-46. doi: 10.1016/j.thromres.2014.12.001.
13. Li J., Wu H., Chen Y., Wu H., Xu H., Li L. Genetic association between FXIII and β-fibrinogen genes and women with recurrent spontaneous abortion: a meta- analysis. J. Assist. Reprod. Genet. 2015; 32(5): 817-25. doi: 10.1007/s10815-015-0471-9.
14. Wang X., Jiang W., Zhang D. Association of 14-bp insertion/deletion polymorphism of HLA-G gene with unexplained recurrent spontaneous abortion: a meta-analysis. Tissue Antigens. 2013; 81(2): 108-15. doi: 10.1111/tan.12056.
15. Agrawal S., Parveen F., Faridi R.M., Prakash S. Interleukin-1 gene cluster variants and recurrent pregnancy loss among North Indian women: retrospective study and meta-analysis. Reprod. Biomed. Online. 2012; 24(3): 342-51. doi: 10.1016/j.rbmo.2011.11.021.
16. Nair R.R., Khanna A., Singh K. Association of interleukin 1 receptor antagonist (IL1RN) gene polymorphism with recurrent pregnancy loss risk in the North Indian Population and a meta-analysis. Mol. Biol. Rep. 2014; 41(9): 5719-27. doi: 10.1007/s11033-014-3443-8.
17. Medica I., Ostojic S., Pereza N., Kastrin A., Peterlin B. Association between genetic polymorphisms in cytokine genes and recurrent miscarriage – a meta-analysis. Reprod. Biomed. Online. 2009; 19(3): 406-14.
18. Bombell S., McGuire W. Cytokine polymorphisms in women with recurrent pregnancy loss: meta-analysis. Aust. N. Z. J. Obstet. Gynaecol. 2008; 48(2): 147-54. doi: 10.1111/j.1479-828X.2008.00843.x.
19. Chen H., Yang X., Du J., Lu M. Interleukin-18 gene polymorphisms and risk of recurrent pregnancy loss: A systematic review and meta-analysis. J. Obstet. Gynaecol. Res. 2015; 41(10): 1506-13. doi: 10.1111/jog.12800.
20. Zhang B., Liu T., Wang Z. Association of tumor necrosis factor-α gene promoter polymorphisms (-308G/A, -238G/A) with recurrent spontaneous abortion: a meta-analysis. Hum. Immunol. 2012; 73(5): 574-9. doi: 10.1016/j.humimm.2012.01.008.
21. Li H.H., Xu X.H., Tong J., Zhang K.Y., Zhang C., Chen Z.J. Association of TNF-α genetic polymorphisms with recurrent pregnancy loss risk: a systematic review and meta-analysis. Reprod. Biol. Endocrinol. 2016; 14: 6. doi: 10.1186/s12958-016-0140-6.
22. Su M.T., Lin S.H., Chen Y.C. Association of sex hormone receptor gene polymorphisms with recurrent pregnancy loss: a systematic review and meta-analysis. Fertil. Steril. 2011; 96(6): 1435-44. e1. doi: 10.1016/j.fertnstert.2011.09.030.
23. Yang C., Fangfang W., Jie L., Yanlong Y., Jie W., Xuefei L. et al. Angiotensin-converting enzyme insertion/deletion (I/D) polymorphisms and recurrent pregnancy loss: a meta-analysis. J. Assist. Reprod. Genet. 2012; 29(11): 1167-73. doi: 10.1007/s10815-012-9870-3.
24. Wang Z., Wang P., Wang X., He X., Wang Z., Xu D. et al. Significant association between angiotensin-converting enzyme gene insertion/deletion polymorphism and risk of recurrent miscarriage: a systematic review and meta-analysis. Metabolism. 2013; 62(9): 1227-38. doi: 10.1016/j.metabol.2013.03.003.
25. Su M.T., Lin S.H., Chen Y.C., Kuo P.L. Genetic association studies of ACE and PAI-1 genes in women with recurrent pregnancy loss: a systematic review and meta-analysis. Thromb. Haemost. 2013; 109(1): 8-15. doi: 10.1160/Th22-08-0584.
26. Pereza N., Ostojić S., Zdravčević M., Volk M., Kapović M., Peterlin B. Insertion/deletion polymorphism in intron 16 of ACE gene in idiopathic recurrent spontaneous abortion: case-control study, systematic review and meta-analysis. Reprod. Biomed. Online. 2016; 32(2): 237-46. doi: 10.1016/j.rbmo.2015.11.003.
27. Su M.T., Lin S.H., Chen Y.C. Genetic association studies of angiogenesis- and vasoconstriction-related genes in women with recurrent pregnancy loss: a systematic review and meta-analysis. Hum. Reprod. Update. 2011; 17(6): 803-12. doi: 10.1093/humupd/dmr027.
28. Cao Y., Zhang Z., Xu J., Wang J., Yuan W., Shen Y. et al. Genetic association studies of endothelial nitric oxide synthase gene polymorphisms in women with unexplained recurrent pregnancy loss: a systematic and meta-analysis. Mol. Biol. Rep. 2014; 41(6): 3981-9. doi: 10.1007/s11033-014-3266-7.
29. Pereza N., Peterlin B., Volk M., Kapović M., Ostojić S. A critical update on endothelial nitric oxide synthase gene variations in women with idiopathic recurrent spontaneous abortion: genetic association study, systematic review and meta-analyses. Mol. Hum. Reprod. 2015; 21(5): 466-78. doi: 10.1093/molehr/gav008.
30. Tang W., Zhou X., Chan Y., Wu X., Luo Y. p53 codon 72 polymorphism and recurrent pregnancy loss: a meta-analysis. J. Assist. Reprod. Genet. 2011; 28(10): 965-9. doi: 10.1007/s10815-011-9618-5.
31. Chen H., Yang X., Wang Z. Association between p53 Arg72Pro polymorphism and recurrent pregnancy loss: an updated systematic review and meta-analysis. Reprod. Biomed. Online. 2015; 31(2): 149-53. doi: 10.1016/j.rbmo.2015.05.003.
32. Chen H., Nie S., Lu M. Association between plasminogen activator inhibitor-1 gene polymorphisms and recurrent pregnancy loss: a systematic review and meta-analysis. Am. J. Reprod. Immunol. 2015; 73(4): 292-300. doi: 10.1111/aji.12321.
33. Li X., Liu Y., Zhang R., Tan J., Chen L., Liu Y. Meta-analysis of the association between plasminogen activator inhibitor-1 4G/5G polymorphism and recurrent pregnancy loss. Med. Sci. Monit. 2015; 21: 1051-6. doi: 10.12659/MSM.892898.
34. Zhang B., Dai B., Zhang X., Wang Z. Vascular endothelial growth factor and recurrent spontaneous abortion: a meta-analysis. Gene. 2012; 507(1): 1-8. doi: 10.1016/j.gene.2012.06.049.
35. Xu X., Du C., Li H., Du J., Yan X., Peng L. et al. Association of VEGF genetic polymorphisms with recurrent spontaneous abortion risk: a systematic review and meta-analysis. PLoS One. 2015; 10(4): e0123696. doi: 10.1371/journal.pone.0123696.
36. Трифонова Е.А., Габидулина Т.В., Агаркова Т.А., Габитова Н.А., Степанов В.А. Гомоцистеин, полиморфизмы гена MTHFR и осложнения беременности. Акушерство и гинекология. 2011; 2: 8-15. [Trifonova E.A., Gabidulina T.V., Agarkova T.A., Gabitova N.A., Stepanov V.A. Homocysteine, MTHFR gene polymorphisms, and pregnancy complications. Akusherstvo i Ginekologiya/Obstetrics and Gynecology. 2011; (2): 8-15. (in Russian)
37. Трифонова Е.А., Габидулина Т.В., Бухарина И.Ю., Степанов В.А. Роль факторов наследственной предрасположенности в развитии преэклампсии: обзор данных мета-анализов. Молекулярная медицина. 2016; 1: 8-14.
38. Ramón L.A., Gilabert–Estellés J., Cosín R., Gilabert J., España F., Castelló R. et al. Plasminogen activator inhibitor-1 (PAI-1) 4G/5G polymorphism and endometriosis. Influence of PAI-1 polymorphism on PAI-1 antigen and mRNA expression. Thromb. Res. 2008; 122(6): 854-60.
39. Serrano N.C., Díaz L.A., Páez M.C., Mesa C.M., Cifuentes R., Monterrosa A. et al. Angiotensin-converting enzyme I/D polymorphism and pre-eclampsia risk: evidence of small-study bias. PLoS Med. 2006; 3(12): e520.
40. Amirchaghmaghi E., Rezaei A., Moini A., Roghaei M.A., Hafezi M., Aflatoonian R. Gene expression analysis of VEGF and its receptors and assessment of its serum level in unexplained recurrent spontaneous abortion. Cell J. 2015; 16(4): 538-45.
41. Galazios G., Papazoglou D., Tsikouras P., Kolios G. Vascular endothelial growth factor gene polymorphisms and pregnancy. J. Matern. Fetal Neonatal Med. 2009; 22(5): 371-8. doi: 10.1080/14767050802645035.
42. Su M.T., Lin S.H., Chen Y.C., Kuo P.L. Gene-gene interactions and risk of recurrent miscarriages in carriers of endocrine gland-derived vascular endothelial growth factor and prokineticin receptor polymorphisms. Fertil. Steril. 2014; 102(4): 1071-7. e3. doi: 10.1016/j.fertnstert.2014.06.042.
Поступила 19.08.2016
Принята в печать 02.09.2016
aig-journal.ru
