Это интересно
- ОКД
- ЗКС
- ИПО
- КНПВ
- Мондиоринг
- Большой ринг
- Французский ринг
- Аджилити
- Фризби
Опрос
Полезные ссылки
РКФ
Все о дрессировке собак
Стрижка собак в Коломне
Поиск по сайту
Дезинфекция и предстерилизационная очистка инструментов при совмещении в один этап. Журнал контроля предстерилизационной очистки
Контроль качества предстерилизационной очистки
Предстерилизационую очистку считают эффективной, если на изделиях после обработки не обнаружены с помощью проб остаточные количества крови и моющих средств. Контроль осуществляется после каждой обработки 1% от одновременно обработанных изделий, но не менее 3 предметов.
Фенолфталеиновая проба на остатки моющего средства. На ватный тампон наносят несколько капель 1 % фенолфталеина и протирают инструмент, появление розовой окраски говорит о некачественной обработке.
Азопирамовая проба – «азопирам» содержит 10% амизопирина, 0,1% соли кислого анилина и 95% этилового спирта. Срок годности 10 суток. Непосредственно перед работой смешивают равные количества азопирама и 3% раствора перекиси водорода, с помощью пипетки или шприца. Срок годности готового раствора 2 часа.
При наличии следов крови менее чем через 1 минуту появляется фиолетовое окрашивание, то результат положительный. Если проба положительная, все инструменты обрабатываются повторно до получения отрицательного результата.
Самоконтроль за качеством предстерилизационной очистки ведется ежедневно, старшей медсестрой - 1 раз в неделю, главной медсестрой - 1 раз в месяц. Ведется журнал контроля качества предстерилизационной очистки.
Ежемесячно проводится производственный контроль, согласно графику лабораторных исследований на санитарно-показательную микрофлору объектов внешней среды и инструментальных замеров в процедурном кабинете на контроль качества проведения текущей дезинфекции (БГКП и золотистый стафилококк), контроль стерильности с рук процедурных медицинских сестер, бактериологические исследования воздушной среды на общее микробное число, золотистый стафилококк, плесневидные грибы и дрожжи.
Ежегодно оценивается состояние параметров микроклимата на рабочих местах (температура, влажность, скорость) и искусственная освещенность.
Укладка биксов
Цель:упаковка для стерилизации в автоклаве, сохранение стерильности в процессе хранения в течение регламентированного времени.
Оснащение:
— дезинфицирующий раствор для обработки бикса (0,03% раствор жавеля или другой регламентированный раствор)
— ветошь для дезинфекции бикса— 2 шт.;
— емкости с дезинфицирующим раствором для ветоши и перчаток;
— перчатки, маска;
— большая салфетка для выстилания бикса без фильтра;
— индикатор стерильности — 3 шт.
Целевая укладка:
- простынь бязевая
- хирургический халат
- маска, косынка (или шапочка)
- перчатки из латекса
- полотенце или большие салфетки для укладки
- малые салфетки
- полотенце личное для вытирания рук
Бирка с указанием отделения (кабинета), содержимого бикса, даты укладки, подписи медицинской сестры, выполнившей процедуру укладки, и времени.
Необходимые условия:
— коробки стерилизационные достаточной вместимости и разной формы;
— белье в количестве, соответствующее нормам загрузки биксов.
| Этапы | Примечания |
| Подготовка к процедуре | |
| 1 . Проверить исправность бикса. | |
| 2. Надеть перчатки, маску. | Обеспечить безопасности на рабочем месте. |
| 3. Обработать бикс изнутри и снаружи дезраствором последовательно, двукратно, разной ветошью. | Обеспечить инфекционную безопасность. |
| 4. Сбросить ветошь для дезинфекции в емкость с дезраствором. Примечание: ветошь используется однократно и подвергается дезинфекции. | |
| 5. Снять перчатки, погрузить в дезраствор. | Соблюдается инфекционная безопасность. |
| 6. Снять маску. | |
| Подготовка к процедуре | Соблюдается личная гигиена медицинской сестры |
| 7. Вымыть руки, вытереть насухо личным полотенцем. | |
| 8. Сложить простынь в четыре слоя, затем согнуть концы, завернуть в рулон рыхло, чтобы легко раскручивалось. | Подготовленная таким образом укладка занимает меньше места в биксе, легко разворачивается и равномерно пропускает пар, способствует стерилизации. |
| 9. Сложить хирургический халат тесемками внутрь, изнанкой наружу, свернуть продольно несколько раз до величины высоты бикса, завернуть в рулон, чтобы легко раскручивался. | |
| 10. Сложить полотенце продольно, затем поперечно, свернуть в рулон рыхло. | Примечание:используется для вытирания рук при хирургическом способе мытья |
| Этапы | Примечания |
| Подготовка к процедуре | |
| 1. Подготовить 4-6 марлевых салфеток. 2. Подготовить четырехслойную маску, завернутую в косынку (от концов ношения к верхушке) или колпак. | Необходимое количество салфеток для двукратной обработки рук антисептиком. |
| 3. Открыть сетку бикса. Примечания: отверстия бикса должны оставаться открытыми до конца стерилизации. | |
| 14. Выстелить бикс салфеткой так, чтобы ее концы свисали на 1/3 высоты бикса. | Обеспечивается герметичность упаковки после стерилизации для сохранения стерильности. |
| Выполнение процедуры | |
| 1 . Поместить на дно бикса индикатор стерильности. | Контроль качества стерилизации в контрольных точках бикса. |
| 2. Уложить в бикс вертикально, рыхло халат, горловиной к крышке. | Удобная форма укладки белья ' и халата, так как сокращается время взятия их из стерильного бикса, необходимое условие для эффективной стерилизации. |
| 3. Простыня. | |
| 4. Маску, завернутую в косынку, поверхностно, между халатом и простыней. | |
| 5. Малые салфетки | |
| 6. Полотенца или салфетки | |
| 7. Поместить индикатор стерильности в центральную часть бикса. | Контроль качества стерилизации в контрольных точках бикса. |
| Окончание процедуры | |
| 1. Накрыть салфеткой, свисающей с краев бикса, весь уложенный материал. | |
| 2. Положить под крышку бикса индикатор стерильности. | Контроль качества стерилизации в контрольных точках бикса. |
| 3. Закрыть крышку бикса на замок. | |
| 4. Привязать к ручке бикса бирку. | Обеспечивается преемственность для работы с биксом. |
| 5. Поставить дату укладки и подпись ответственного за укладку. | Личная ответственность. |
| 6. Доставить бикс в ЦСО в плотном влагостойком мешке. | Примечание: мешок подлежит стерилизации в ЦСО и используется для эффективной транспортировки биксов из ЦСО. |
Срок годности бикса без фильтра 3 суток, с фильтром 20, филтр на биксе должен меняться через 60 стерилизаций.
poisk-ru.ru
Контроль качества предстерилизационной очистки.
Проводится после завершающего этапа предстерилизационной очистки - подсушивания инструментов. Выполняют пробы на наличие остатков крови и моющих средств на инструментах, шприцах, иглах и пр.
Амидопириновая проба.
Смешивают равные количества 0,5% спиртового раствора амидопирина, 30% уксусной кислоты и 3% раствора перекиси водорода /по 2-3 мл/.
На нестерильную вату наносят вышеказанный реактив. Через несколько секунд при отсутствии цветовой реакции на вате, этой ватой протирают инструменты или поршень щприца многоразового использования, цилиндр с наружной стороны, иглы, канюлю внутри. Затем заливают реактив в цилиндр шприца, пропускают его через шприц на другую вату /проверяется цилиндр шприца/.
После этого закрепляют на шприце иглу, вновь наливают в цилиндр реактив и пропускают через шприц и иглу /проверяется игла/.
Оценка результатов амидопириновой пробы.
- при наличии кровяных загрязнений на вате появляется сине-зеленое окрашивание; окрашивание может быть и при наличии на шприце, а также в игле, лекарственных средств и хлорамина;
- при положительных пробах повторный контроль инструмента проводят до получения трехкратного отрицательного результата.
/Из методических рекомендаций по предстерилизационной очистке изделий медицинского назначения N 28 - 6/13 от 08.06.82 г/.
Азопирамовая проба.
Готовят в аптеке 1% или 1,5% раствор солянокислого анилина в 95% этиловом спирте. Готовый раствор может храниться в плотно закрытом флаконе в темноте /в холодильнике/ 2 месяца, в комнате при температуре + 18-23 гр.С не более одного месяца. Умеренное пожелтение реактива, наступающее в процессе хранения, без выпадения осадка не снижает его рабочих качеств. Непосредст-венно перед постановкой пробы готовят рабочий раствор, смешивая равные по объему количества азопирама и 3% перекиси водорода. Рабочий раствор должен быть использован в течение 1-2 часов. При более длительном хранении может появиться спонтанное розовое окрашивание реактива. При температуре +25 гр.С. раствор розовеет быстрее. Поэтому его наиболее целесообразно использовать в течение 30-40 минут после приготовления. Из-за изменения окраски раствора в условиях высокой температуры нельзя держать его на ярком свете, вблизи отопительных приборов, наносить на горячие инструменты.
Пригодность рабочего раствора азопирама проверяют при необходимости путем нанесения 2-3 его капель на кровяное пятно. Если не позднее чем через 1 мин. появляется фиолетовое окра-шивание, переходящее в сиреневый цвет - реактив пригоден к применению. Если окрашивание в течение 1 минуты не появляется - реактивом пользоваться нельзя.
/Выписка из инструктивно-методических рекомендаций по контролю качества предстерилизационной очистки изделий меди-цинского назначения с помощью реактива азопирам N 28-6/13 от 26.05.86 г./.
Бензидиновая проба.
Не позднее чем за 2 часа до проведения пробы готовят реактив. В мезурку помещают несколько кристаллов бензидина, 2-3 мл 50% уксусной и кислоты столько же 2% раствора перекиси водорода.
Ортолидиновая проба.
Состав реактива: 2-3 мл 50% уксусной кислоты, 0,25 г орто-лидина и 2-3 мл 3% перекиси водорода.
Оценка результатов проведения проб на наличие
Остатков крови на изделиях
Контролируемые изделия должны быть сухими, иметь ком-натную температуру. При постановке проб на контролируемые изделия наносят по 1 капле реактива. При наличии внутренних каналов реактив пропускают через них. Оценка проб проводится не позднее чем через 1 минуту. При наличии на изделии остатков крови во время проведения амидопириновой пробы появляется сине-зеленое окрашивание, при азопирамовой пробе - сначало фиолетовое, затем розово-сиреневое. При положительной реакции на наличие остатков крови все этапы предстерилизационной очистки необходимо повторить до получения отрицательного результата.
Определение остатков моющих средств на изделии фенолфталеиновой пробой.
Готовят 1% спиртовый раствор фенолфталеина. Наносят на контролируемое изделие 1-2 капли раствора. При наличии внут-ренних каналов у изделий, пропускают реактив через эти каналы. Контролируемое изделие должно быть сухим и иметь комнатную температуру. Оценка результатов пробы проводится не позднее чем через 1 минуту. При наличии остаточного количества моющего средства появляется розовое окрашивание. В этом случае изделие промывают под проточной водой, а затем в дистиллированной воде до получения отрицательного результата. При использовании моющего средства "Билот" проба с фенолфталеином не проводится.
/Из методических рекомендаций по контролю качества пред-стерилизационной очистки изделий медицинского назначения N 28-6/13 от 08.06.82 г/.
Общие требования к оценки качества
предстерилизационной очистки
- качественный контроль на остаточное количество крови и моющих средств проводится только после предстерили-зационной очистки, проведенной в полном объеме;
- котролируемые изделия должны быть сухими и иметь комнатную температуру;
- оценка проб проводится не позднее 1 минуты после нанесения реактива на изделие;
- контролю качества предстерилизационной очистки подлежит 1% каждого вида изделий, обрабатываемых одновременно, но не менее 3-5 единиц;
- при выявлении положительной пробы на повторную обработку отправляется вся партия изделий, от которых отбирался конт-роль, до получения отрицательных результатов;
- контроль качества предстерилизационной очистки проводят в отделении ежедневно, старшей сестрой отделения - не реже 1 раза в неделю, сотрудниками санитарно-эпидемиологических и дезинфекционных станций - не реже 1 раза в квартал;
- сведения о результатах контроля заносят в специальный журнал /Из приказа МЗ СССР N 408 от 12.07.89 г./.
Предстерилизационная очистка завершается комплектованием /упаковкой/ медицинских изделий.
Современные средства для мытья
Медицинских инструментов
БЛАНИЗОЛ.
Высокоэффективное концентрированное средство для мытья медицинских инструментов из любых материалов, в том числе и эндоскопов. Применяется и как усилитель моющих свойств кати-онных дезинфицирующих средств /Дезоформ, Лизоформин-3000/, мытья помещений, мебели, санитарно-технического оборудова-ния. Малотоксичен. Применяется только в разбавленном виде.
ПРИГОТОВЛЕНИЕ РАБОЧИХ РАСТВОРОВ
| Концентрация рабочего раствора, % | Количество препарата, г | Количество воды, мл |
| 0,25 | 2,5 | 997,5 |
| 0,5 | 5,0 | 995,0 |
| 10,0 | 990,0 |
Режимы обработки.
При слабом загрязнении используется 0,25% раствор, сильном – 0,5% или 1% растворы. Время обработки 30 минут. Изделия с влагостойкими поверхностями обрабатываются 0,25% раствором /слабое загрязнение/, или 0,5% раствором /сильное загрязнение/. Время обработки определяется необходимостью дальнейшей очистки.
Помещения, мебель, сантехника обрабатываются 0,25% - 0,5% растворами. Такие же концентрации используются и для добавления к дезинфектантам.
После обработки - промывание водой в течение 5-15 минут. /Из методических рекомендаций СКСЭН N 4398 от 23.03.95 г./.
ЛИЗОФОРМИН-3000
При обработке инструментов сильно загрязненных кровью и другими органическими веществами для предотвращения фиксирующего действия и совмещения предстерилизационной очистки с дезинфекцией в одной процедуре рекомендуется использовать Лизоформин-3000 + Бланизол в концентрациях 0,25% - 0,5% в зависимости от степени загрязнения.
САЙДЕЗИМ /Дожсон и Джонсон, США/
- содержит протеолитические ферменты;
- не вызывает закупорки каналов эндоскопов;
- вызывает слабое пенообразование, что позволяет использовать в автоматизированном моющем оборудовании;
- не оставляет отложений на инструментах;
- моющее действие проявляется при комнатной температуре в связи с чем отпадает необходимость в подводе горячей воды;
- обладает дезодорирующим эффектом;
- совместим со многими материалами;
- быстрота действия /моющий эффект наступает через 1 минуту/.
Выпускается в упаковке с 12 бутылями по 1л или с 4 бутылями по 5 литров. Срок годности 2 года. Используют в концентрации 0,8% или 1,6% . Для этого соответственно разводят в 1 л воды 8 мл или 16 мл моющего раствора Сайдезим. Используют свежеприготовленный раствор. Отработанные растворы утили-зируются путем слива в канализацию.
СЕПТОДОР /фирма "Дорвейт ЛТД", Израиль/
Используется для предстерилизационной очистки изделий из металлов, резины, пластмасс, стекла. Не вызывает коррозию металлов и повреждение изделий из термолабильных материалов.
Рабочие растворы готовят путем добавления соответствующих количеств концентрата к питьевой водопроводной воде.
stydopedia.ru
2.1.1. Контроль качества предстерилизационной очистки
Проводится после завершающего этапа предстерилизационной очистки – подсушивания инструментов. Выполняют пробы на наличие остатков крови и моющих средств на инструментах, шприцах, иглах и пр.
Для выявления остатков крови проводят амидопириновую или азопирамовую пробы, а, если это невозможно, – бензидиновую или ортотолидиновую пробы.
Амидопириновая проба
Смешивают равные количества 0,5% спиртового раствора амидопирина, 30% уксусной кислоты и 3% раствора перекиси водорода (по 2-3 мл).
На нестерильную вату наносят вышеказанный реактив. Через несколько секунд при отсутствии цветовой реакции на вате, этой ватой протирают инструменты или поршень щприца многоразового использования, цилиндр с наружной стороны, иглы, канюлю внутри. Затем заливают реактив в цилиндр шприца, пропускают его через шприц на другую вату (проверяется цилиндр шприца).
После этого закрепляют на шприце иглу, вновь наливают в цилиндр реактив и пропускают через шприц и иглу (проверяется игла).
Оценка результатов амидопириновой пробы
при наличии кровяных загрязнений на вате появляется сине-зеленое окрашивание; окрашивание может быть и при наличии на шприце, а также в игле, лекарственных средств и хлорамина;
при положительных пробах повторный контроль инструмента проводят до получения трехкратного отрицательного результата.
(Из методических рекомендаций по предстерилизационной очистке изделий медицинского назначения № 28 – 6/13 от 08.06.82 г).
Азопирамовая проба
Готовят в аптеке 1% или 1,5% раствор солянокислого анилина в 95% этиловом спирте. Готовый раствор может храниться в плотно закрытом флаконе в темноте (в холодильнике) 2 месяца, в комнате при температуре + 18-23 С не более одного месяца. Умеренное пожелтение реактива, наступающее в процессе хранения, без выпадения осадка не снижает его рабочих качеств. Непосредственно перед постановкой пробы готовят рабочий раствор, смешивая равные по объему количества азопирама и 3% перекиси водорода. Рабочий раствор должен быть использован в течение 1-2 часов. При более длительном хранении может появиться спонтанное розовое окрашивание реактива. При температуре +25С. раствор розовеет быстрее. Поэтому его наиболее целесообразно использовать в течение 30-40 минут после приготовления. Из-за изменения окраски раствора в условиях высокой температуры нельзя держать его на ярком свете, вблизи отопительных приборов, наносить на горячие инструменты.
Пригодность рабочего раствора азопирама проверяют при необходимости путем нанесения 2-3 его капель на кровяное пятно. Если не позднее чем через 1 мин. появляется фиолетовое окрашивание, переходящее в сиреневый цвет – реактив пригоден к применению. Если окрашивание в течение 1 минуты не появляется – реактивом пользоваться нельзя.
(Выписка из инструктивно-методических рекомендаций по контролю качества предстерилизационной очистки изделий медицинского назначения с помощью реактива азопирам № 28-6/13 от 26.05.86 г.).
Бензидиновая проба
Не позднее чем за 2 часа до проведения пробы готовят реактив. В мезурку помещают несколько кристаллов бензидина, 2-3 мл 50% уксусной и кислоты столько же 2% раствора перекиси водорода.
Ортолидиновая проба
Состав реактива: 2-3 мл 50% уксусной кислоты, 0,25 г ортолидина и 2-3 мл 3% перекиси водорода.
Оценка результатов проведения проб на наличие остатков крови на изделиях
Контролируемые изделия должны быть сухими, иметь комнатную температуру. При постановке проб на контролируемые изделия наносят по 1 капле реактива. При наличии внутренних каналов реактив пропускают через них. Оценка проб проводится не позднее чем через 1 минуту. При наличии на изделии остатков крови во время проведения амидопириновой пробы появляется сине-зеленое окрашивание, при азопирамовой пробе – сначала фиолетовое, затем розово-сиреневое. При положительной реакции на наличие остатков крови все этапы предстерилизационной очистки необходимо повторить до получения отрицательного результата.
Определение остатков моющих средств на изделии фенолфталеиновой пробой
Готовят 1% спиртовый раствор фенолфталеина. Наносят на контролируемое изделие 1-2 капли раствора. При наличии внутренних каналов у изделий, пропускают реактив через эти каналы. Контролируемое изделие должно быть сухим и иметь комнатную температуру. Оценка результатов пробы проводится не позднее чем через 1 минуту. При наличии остаточного количества моющего средства появляется розовое окрашивание. В этом случае изделие промывают под проточной водой, а затем в дистиллированной воде до получения отрицательного результата. При использовании моющего средства "Биолот" проба с фенолфталеином не проводится.
(Из методических рекомендаций по контролю качества предстерилизационной очистки изделий медицинского назначения № 28-6/13 от 08.06.82 г).
Общие требования к оценки качества предстерилизационной очистки
качественный контроль на остаточное количество крови и моющих средств проводится только после предстерилизационной очистки, проведенной в полном объеме;
котролируемые изделия должны быть сухими и иметь комнатную температуру;
оценка проб проводится не позднее 1 минуты после нанесения реактива на изделие;
контролю качества предстерилизационной очистки подлежит 1% каждого вида изделий, обрабатываемых одновременно, но не менее 3-5 единиц;
при выявлении положительной пробы на повторную обработку отправляется вся партия изделий, от которых отбирался контроль, до получения отрицательных результатов;
контроль качества предстерилизационной очистки проводят в отделении ежедневно, старшей сестрой отделения – не реже 1 раза в неделю, сотрудниками санитарно-эпидемиологических и дезинфекционных станций – не реже 1 раза в квартал;
сведения о результатах контроля заносят в специальный журнал (Из приказа МЗ СССР № 408 от 12.07.89 г.).
Предстерилизационная очистка завершается комплектованием (упаковкой) медицинских изделий.
studfiles.net
Предстерилизационная очистка. Этапы, контроль качества предстерилизационной очистки :: BusinessMan.ru
Предстерилизационная обработка является необходимым условием для того, чтобы очистить инструменты и все изделия медицинского назначения от разного рода жировых, белковых, других механических загрязнений и остатков лекарственных средств. Такую очистку необходимо проводить, так как именно инструменты и материалы представляют собой самый приоритетный фактор при передаче инфекций гемоконтактного характера. Чтобы минимизировать риск заражения, в современной медицинской практике практикуется применение одноразовых расходных материалов и 3-ступенчатая обработка инструментов и изделий многоразового применения (дезинфекция, предстерилизационная очистка, стерилизационные мероприятия).
Почему недостаточно только дезинфекции?
Этого действительно недостаточно для дальнейшего безопасного применения инструментов и медицинских изделий, уже бывших в употреблении. Во время проведения дезинфекции могут быть допущены ошибки, которые без двух остальных этапов обработки (предстерилизационная очистка, стерилизация) не позволят получить биологически безопасный инструментарий.
Во-первых, для дезинфекции могут быть использованы средства и методики, не разрешенные к применению. Возможно, на вещества отсутствует требуемый разрешительный пакет документов, либо его использование недопустимо в учреждениях лечебно-профилактического профиля, либо оно (средство) вообще фальсифицировано и не может применяться с какой бы то ни было целью.
Во-вторых, могут быть нарушены условия, при которых эти средства для дезинфекции хранились и транспортировались (температурный режим, длительное нахождение в зоне влияния прямого солнечного света, истекший срок годности). Средство может быть неверно подобрано (не уничтожает возбудителей гепатитов группы В и С, ВИЧ), что делает дальнейшие действия, в частности, такое как предстерилизационная очистка и мероприятия по стерилизации, бесполезными.
Кроме того, неверно выбранный режим дезинфекции не обеспечит уничтожения возбудителей гемоконтактных инфекций. Да и сама дезинфекция может быть проведена некорректно (ошибки при расчете концентрации, не соблюдено время экспозиции, у рабочего раствора истек срок годности).
Факторы риска при очистке
Даже одна (не говоря уже о нескольких) ошибка практически сводит на "нет" эффективность дезинфицирующих мероприятий. В итоге предстерилизационная очистка изделий медицинского назначения может представлять опасность для медперсонала в биологическом плане.
Помимо этого, существует вероятность инфицирования в процессе проведения второго этапа очистки по причине непосредственного контактирования медработника с инструментами и изделиями. В наибольшей степени это можно отнести к ручному типу обработки (будет описан ниже), однако при механическом человек также соприкасается с инструментарием при перекладывании и сортировке.
Далее важно, чтобы медперсонал во избежание инфицирования не пренебрегал средствами индивидуальной защиты (речь идет о перчатках). Еще стоит сказать о том, что основная масса современных дезинфицирующих средств предназначена для совмещения таких процессов, как дезинфекция и предстерилизационная очистка. Однако погружение в такой раствор медицинского изделия отнюдь не означает, что проведены сразу оба эти мероприятия – и дезинфекция, и очистка. После окончания первого этапа должен быть обязательно проведен второй.
Обработка ручным способом
Этапы предстерилизационной очистки ручным способом выглядят следующим образом. После того как все изделия продезинфицированы и тщательно промыты в проточной воде, их в разобранном виде помещают в моющий состав. Все каналы и полости обрабатываемых изделий должны быть полностью погружены в жидкость и ею заполнены. Продолжительность замачивания зависит от применяемого моющего средства и может составлять от 15 минут до 1 часа. Затем каждое изделие отдельно моют ершиком или протирают ватно-марлевым тампоном не менее 1 минуты.
Далее изделия и инструменты ополаскиваются в проточной воде. Продолжительность процедуры зависит от применяемого средства. В раковине, которая используется на этом этапе, недопустимо мытье рук медперсонала.
Последний этап при ручной обработке состоит в том, что все изделия и инструменты ополаскиваются в дистиллированной воде и просушиваются в потоке горячих воздушных масс.
Совмещенная обработка
Медицинская предстерилизационная очистка может быть совмещена с мероприятиями по дезинфекции, и проводится она вручную. На начальном этапе все изделия замачивают в специальных моющих средствах, обладающих дезинфицирующими свойствами. Далее каждая обрабатываемая единица по отдельности моется ершиком или очищается ватно-марлевым тампоном на протяжении 1 минуты. Здесь важно помнить о поддержании температурного режима, если это оговорено в инструкции по применению моющего состава.
Далее каждая единица инструментария и медизделий ополаскивается в проточной воде на протяжении времени, необходимого для конкретного средства (указано в инструкции). Применение раковины, в которой производится процедура, для других целей недопустимо. На конечном этапе каждая единица ополаскивается дистиллированной водой и сушится под горячим воздухом.
Механический способ очистки изделий
В современных больших лечебных учреждениях чаще всего применяется механическая предстерилизационная очистка изделий. Все инструменты и изделия помещают в специальное оборудование, основные функции которого - проведение мероприятий по дезинфекции и предстерилизационной обработке. Для такого вида работ могут быть использованы дезинфицирующие вещества, обладающие дополнительно моющим эффектом, или предназначенные отдельно для дезинфицирования и мойки. Если дезинфекция осуществляется термическим способом, то для дальнейшей очистки возможно использование только моющих средств. Если для конкретного оборудования оговорена какая-то другая технология, значит, мероприятия по очистке проводят в соответствии с инструкцией.
Далее изделия и инструменты ополаскивают в проточной воде. Продолжительность процедуры – согласно инструкции по использованию моющего средства. Этот этап может являться частью функционального цикла задействованного оборудования.
Завершается механическая предстерилизационная очистка ополаскиванием (вода дистиллированная) всех обработанных элементов и сушкой горячими воздушными массами. Этот этап также может являться частью функционального цикла применяемого оборудования.
Преимущества механической обработки
Сегодня наиболее перспективной и предпочтительной считается предстерилизационная очистка медицинских изделий механическим способом. И тому есть несколько причин.
На самом высоком уровне обеспечивается биологическая безопасность медперсонала, так как тактильные контакты людей с медицинскими инструментами и изделиями сведены к минимуму. Далее, этот способ самый экономически эффективный, так как, во-первых, для обработки большого количества инструментов и медицинских изделий не требуется много времени, а во-вторых, сводится к минимуму возможность повредить дорогостоящий инструментарий (как результат - увеличивается срок его службы).
При таком способе очистки обеспечивается наибольшая биологическая безопасность пациентов: изделия и инструменты самой сложной конфигурации качественно очищаются.
Оборудование и выбор моющих средств
В настоящее время на территории РФ зарегистрированы и разрешены к использованию два вида оборудования для механической обработки, имеющие существенные различия. Принцип работы одного основан на использовании ультразвука. Предстерилизационная очистка инструментов в другом виде оборудования осуществляется моющими средствами, не содержащими в своем составе дезинфекционных компонентов, так как дезинфекция проводится термическим способом. Этот вид оборудования в медицинской среде носит название термодезинфектора.
Второй вид оборудования обладает явными преимуществами перед ультразвуковыми аппаратами, т. к. в термодезинфекторе, по сути, осуществляется полный цикл обработки медизделий и инструментария – дезинфекция, очистка, ополаскивание, сушка. На долю человека остается корректно провести загрузку инструментов, а затем правильно их извлечь.
Еще один важный нюанс – это подбор моющих средств. Разрешены для использования два вида: на основе ПАВ (поверхностно-активных веществ) и ферментов. Первые обладают высокими моющими качествами и более востребованы на рынке. Однако у этих средств имеются некоторые недостатки.
Во-первых, для них характерно высокое пенообразование, а это может стать критичным фактором ввиду несовместимости моющего состава и оборудования при механической очистке.
Во-вторых, после моющих, произведенных на основе ПАВ, на обработанной поверхности медицинских изделий и инструментов остается пленка, для смывания которой потребуется особенно тщательное ополаскивание.
В-третьих, чтобы получить самый оптимальный результат, требуется поддерживать определенную температуру, при которой проводится предстерилизационная очистка.
Моющие вещества, изготовленные на основе ферментов, обладают возможностями разрушения не только стенок бактериальных клеток, белковых оболочек вирусов, но и биопленки. Помимо этого, для ферментированных моющих средств характерно низкое пенообразование, и они не теряют активности при комнатных температурах.
Контроль качества: остатки биологических жидкостей
Для определения остатков крови контроль качества предстерилизационной очистки производится с применением нескольких проб: бензидиновой, ортотолидиновой, амидопириновой и азопирамовой.
Бензидиновая проба может осуществляться двумя способами. Водный раствор бензидина хлорида 0,5-1 %-ного (вода - дистиллированная) соединяют с таким же объемом 3 %-ного раствора перекиси водорода. Второй вариант состоит в приготовлении раствора из 5 мл 50 %-ной уксусной кислоты и 0,025 г бензидина сульфата с перекисью водорода (3 %) в объеме 5 мл.
Ортотолидиновая проба может производиться в 3 модификациях. 5-10 мл основного спиртового раствора (ортотолидин - 4 %, спирт этиловый - 96 %) смешивают с такими же объемами дистиллированной воды и уксусной 50-процентной кислоты. Вторая модификация состоит в смешивании реактива, состоящего из 0,25 г ортотолидина и равных объемов (по 5 мл) 50 %-ной уксусной кислоты и 3 %-ной перекиси водорода. Третий вариант состоит в соединении равных объемов 1 %-ного водного раствора ортотолидина и 3 %-ной перекиси водорода.
Для того чтобы провести контроль предстерилизационной очистки с помощью амидопириновой пробы, готовят реактив из одинаковых (2-3 мл) объемов 5 %-ного спиртового раствора амидопирина, 30 %-ной уксусной кислоты и 3 %-ной перекиси водорода. 2 капли готового реактива наносят на негорячую поверхность. В случае если проба приобрела сине-фиолетовый оттенок, поверхность очищена недостаточно качественно.
Реактив для проведения азопирамовой пробы изготавливают на основе исходного раствора азопирама. В свою очередь, этот раствор состоит из смешанных вместе 100 г амидопирина и 1 г соляно-кислого анилина, дополненных до 1 л этиловым спиртом (95 %). Приготовленный таким образом состав можно хранить (тара – закупоренный флакон) без доступа света при комнатной температуре на протяжении 1 месяца, в холодильнике – до 2 месяцев. Когда потребуется проводить пробу, смешивают в равных долях исходный азопирам и 3 %-ную перекись водорода. Если после нанесения реактива на холодную поверхность проба становится фиолетовой, а затем быстро меняет цвет на розово-сиреневый, значит, на инструментах и изделиях присутствуют остатки крови.
При проведении азопирамовой пробы важно учесть некоторые особенности реакции. Приготовленный для проверки реактив допустимо использовать не позднее чем в течение 1-2 часов. Хранить его в это время при ярком свете и повышенной температуре недопустимо. Изменение цвета пробы, наступившее спустя минуту после нанесения, не дает оснований считать, что качество предстерилизационной очистки не соответствует требуемому по инструкции.
В процессе предстерилизационной очистки весьма нежелательно вместо перекиси водорода использовать таблетки гидропирита. Причина в том, что раствор гидропирита способствует быстрому образованию коррозии, а это приводит к порче инструментов, особенно с режущими плоскостями. Если ощущается дефицит медицинской перекиси водорода, ее допустимо в процессе обработки заменить технической перекисью марки А и Б.
На контролируемые изделия наносят капли реактивов. При наличии остатков крови состав окрашивается в сине-зеленый цвет.
Контроль качества: остатки моющих средств
Все этапы предстерилизационной очистки при любом способе обработки (ручной, совмещенный, механический) завершаются ополаскиванием медицинских изделий и инструментов. Качественно ли проведен этот этап, можно определить с помощью фенолфталеиновой пробы. 1-2 капли однопроцентного спиртового раствора фенолфталеина наносят на обработанное (т. е. вымытое) изделие. Если оно вымыто недостаточно качественно, и на его поверхности присутствуют остатки моющих средств, проба приобретет розовый оттенок.
Пробы положительные…
Если хотя бы одна из проводимых проб даст положительный результат, значит, на обработанных поверхностях присутствуют либо кровяные загрязнения, либо остатки моющих средств, с применением которых проводилась обработка. В таких случаях все изделия и инструменты подлежат повторной обработке до тех пор, пока контроль качества предстерилизационной очистки не даст отрицательных результатов (т. е. пробы не будут изменять цвет).
Контролю качества и эффективности предстерилизационной очистки должен подвергаться 1 % каждого инструмента и вида изделий, которые проходят обработку в течение суток. Специалисты дезинфекционных или санитарно-эпидемиологических станций должны контролировать качество предстерилизационной обработки в лечебных и лечебно-профилактических учреждениях не реже, чем 1 раз в течение квартала.
businessman.ru
Дезинфекция и предстерилизационная очистка инструментов при совмещении в один этап.
I. 1. Физический метод – кипячение в 2% растворе питьевой соды 15 мин
2. Мойка каждого инструмента ватно-марлевым тампоном в этом же растворе 1 мин.
3. Ополаскивание в проточной воде 3 мин.
4. Обессоливание в дистиллированной воде 30 сек.
5. Сушка.
| Наименование препарата | Уровень дезинфекции | Концентрация раствора (%) | Температура раствора t0C | Экспозиция (мин) | Мойка (мин) | Ополаскивание в проточной воде (мин) | Ополаскивание в дистиллированной воде (мин) | Срок годности рабочего раствора (дней) |
| Сепотосан-Т | Бактериальные вирусные туберкулез | 0,5 | ||||||
| Триацид | При всех инфекциях | |||||||
| Дезоэфект | При всех инфекциях | 2,3 2,8 | Не поддерживается | 0,5 | ||||
| Самаровка | При всех инфекциях | |||||||
| Аламинол | При всех инфекциях | |||||||
| Лизафин | При всех инфекциях | 0,5 | ||||||
| Деконекс денталь ББ | При всех инфекциях | Готовое к применению |
Контроль качества предстерилизационной очистки
Качество предстерилизационной очистки оценивается по отсутствию положительных проб:
1. На кровь – азопирамовая проба;
2. На моющие средства – фенолфталеиновая проба;
3. На масляные препараты – проба с суданом. Эта проба ставится только на изделия, испачканные масляными препаратами.
Мед. сестра самоконтроль осуществляет после каждой обработанной партии, старшая мед. сестра – один раз в неделю, ЦГСЭН – один раз в месяц в отделениях хирургического профиля и один раз в квартал – в отделениях терапевтического профиля.
Условия проведения контроля
1. Контролю подлежит 1% от обработанной партии, но не менее 3-5 штук.
2. Инструмент должен быть холодным и сухим.
При несоблюдении этих условий может быть ложноположительная реакция.
Азопирамовая проба
Маточным раствором является азопирам, который в холодильнике хранится 2 месяца, вне холодильника – 1 месяц с момента изготовления азопирама.
Рабочий раствор азопирама готовится из равных объемов азопирама и 3% раствора перекиси водорода перед применением.
Срок годности рабочего раствора азопирама 40 мин.
Рабочий раствор азопирама проверяется на пригодность не реже одного раза в неделю: на предметное стекло с мазком крови капается 2-3 капли рабочего раствора азопирама, если в течение одной минуты появилось сине-фиолетовое окрашивание, раствор годен к применению.
Техника проведения пробы
Лоток выстилается белой салфеткой, на которую кладется 3-5 шт. инструментов. Инструменты должны быть разной конструкции. Раствор капается на рабочие поверхности, трудно отмываемые части инструмента.
В инструменты, имеющие полости или каналы, раствор набирается, а на плоские – капается из пипетки 2-3 капли раствора и сразу засекается время.
Если в течение одной минуты появилось сине-фиолетовое окрашивание 0 реакция на кровь положительная; бурое – на хлор и ржавчину, розовое – на моющие средства.
Результаты азопирамовой пробы заносятся в журнал.
Журнал учета качества предстерилизационной обработки
Начат «___»___20__г. Окончен «__»____20__г.
Результаты выборочного химического контроля
обработанных изделий
| Дата | Способ обработки | Применяемое средство | Наименование изделий | Количество штук | Из них загрязненных | Фамилия лица, проводившего контроль | |
| Кровью | Моющими средствами | ||||||
В случае положительной пробы на кровь, моющие средства, всю группу контролируемых изделий, из которой отбирали контроль, подвергаются очистке.
Фенолфталеиновая проба
Рабочий раствор – 1% спиртовой раствор фенолфталеина. В холодильнике хранится один месяц, вне холодильника – 15 дней.
Техника постановки пробы как и азопирамовая.
Если появилось в течение одной минуты розовое окрашивание, реакция на моющие средства положительная.
Проба суданом-3
Проба ставится только на инструменты, испачканные масляными препаратами.
Рабочий раствор – судан-3. В холодильнике хранится 6 мес., вне холодильника – 3 мес.
Техника постановки пробы.
Инструмент протирается салфеткой, смоченной суданом-3, через 10 сек. Инструмент ополаскивается проточной водой, обильной струей. Если на инструменте появились желтые пятна или подтеки, реакция на масляные препараты положительная. При отрицательных пробах растворы не меняют свою окраску.
При положительных пробах вся партия инструментов проходит повторную обработку.
Инструменты, использованные для контроля, при положительных и отрицательных пробах подвергаются повторной обработке.
III этап – стерилизация
Цель – уничтожить на инструментах все виды микроорганизмов, в т.ч. капсульные и споровые.
Методы стерилизации
1. Физические – паровой, воздушный, радиационный , гласперленовый.
2. Химические – газовый или растворами химических препаратов.
3. Комбинированный (плазменный).
Выбор метода стерилизации зависит от материала, из которого изготовлен инструмент.
Паровой метод (автоклавирование)
Стерилизация осуществляется парами высокой температуры и под давлением.
| Наименование изделий | Режим стерилизации | Условия стерилизации |
| 1. Изделия из металла, стекла, текстильных материалов (химконтроль – мочевина или термоиндикаторная лента ИС – 1320С) 2. Изделия из резины, пластмассы, латекса (химконтроль – бензойная кислота или ИС – 1200С) | 2 атм., 1320С, 20 мин 1,1 атм, 1200С, 45 мин | Изделия упаковываются: 1) в биксы с фильтрами – 20 суток, 2)в биксы без фильтра – 3 суток 3)в 2-х слойную бязь – 1 сутки 4)в крафт бумагу Если завернуть в 2-х слойную крафт бумагу – 1 сутки, если упаковать в 2-х слойный конверт и заклеить или клеем из крахмала, или специальным клеем (герметический) – 20 суток) |
Подготовка биксов к стерилизации
Бикс, перед упаковкой в него изделий, протирается 2-х кратно с интервалом 15 мин. Внутри и снаружи рабочим дезинфицирующим раствором, затем бикс внутри выстилается большой салфеткой, которая должна снаружи бикса свисать на 2/3 высоты бикса. На дно кладется индикатор. Изделия, упакованные в бязь или крафт-бумагу, укладываются в бикс в вертикальном положении или на ребро, расстояние между упаковками равно толщине ладони (правило ладони). В середину бикса кладется индикатор. Большой салфеткой изделия закрываются и наверх кладется еще один индикатор. Бикс закрывается и к ручке бикса прикрепляется бирка, на которой проставляется дата и час упаковки бикса и указываются изделия, уложенные в бикс. Окошечки бикса обязательно закрыты. Биксы доставляются в ЦСО в двух мешках, внутренний мешок матерчатый и наружный клеенчатый, если отделение находится с ЦСО в одном здании. При доставке биксов через улицу, они помещаются в три мешка, внутренний и наружные – матерчатые, в середине – клеенчатый мешок.
Мешки один раз в неделю стираются, а внутренний матерчатый мешок стерилизуется вместе с биксом, т.к. стерильный бикс выдается в стерильном мешке. Клеенчатые мешки, перед закладкой в них стерильного бикса, протираются двукратно с интервалом 15 мин., внутри и снаружи рабочим дезинфицирующим раствором.
Биксы перед вскрытием протираются двукратно с интервалом 15 мин. Рабочим дезинфицирующим раствором, проверяется на герметичности и сроки стерилизации. На бирке должна быть проставлена дата, час стерилизации бикса и роспись мед. сестры, проводившей стерилизацию. Мед. сестра на бирке проставляет дату, час вскрытия бикса и свою роспись.
При вскрытии бикса обращается внимание:
1. На индикатор, если мочевина, кристаллы должны быть расплавлены, индикаторная лента должна быть коричневого цвета. Индикатор не удаляется из бикса до тех пор, пока там находятся стерильные изделия. При выкладке изделий на стерильный стол, индикатор из бикса переносится на стол, а по окончании работы наклеивается в журнал.
2. Изделия в биксе должны быть сухими, влажные изделия не стерильны!
Во избежание получения влажных медицинских изделий, биксы перед получением их и выдачей – взвешиваются.
После вскрытия бикса изделия, выложенные на стерильный стол, стерильны шесть часов; изделия, оставленные в биксе стерильны еще 1 сутки. Упаковки из бикса берутся только стерильным пинцетом.
infopedia.su
Персональный сайт - Контроль качества предстерилизационной очистки
Контроль качества предстерилизационной очистки
Качество предстерилизационной очистки оценивается по отсутствию положительных проб:
1. На кровь - азопирамовая проба.
2. На моющие средства - фенолфталеиновая проба (в случаях применения дезинфекционных средств, рабочие растворы которые имеют pH более 8,5) в соответствии с действующими методическими документами и инструкциями по применению конкретных средств.
3. На масляные препараты - проба с суданом III. Эта проба ставится с изделиями, испачканными масляными препаратами.
Медицинская сестра самоконтроль осуществляет после каждой обработанной партии, старшая медсестра - один раз в неделю, главная медицинская сестра- один раз в месяц .
Условия проведения контроля:
1. Контролю подлежит на рабочих местах 1 % от обработанной партии, но не менее 3-5 единиц, в ЦСО 1% от каждого наименования изделия..
2. Реакция читается в течение одной минуты.
3. Инструмент должен быть холодным(комнатной температуры) и сухим.
4. Рабочий раствор готовится перед применением.
5. Срок хранения маточного раствора азопирама: в холодильнике хранится 2 месяца, а вне холодильника - 1 месяц.
При несоблюдении этих условий может быть ложно-положительная реакция.
Азопирамовая проба
Рабочий раствор азопирама готовится из равных объемов маточного раствора азопирама и 3% раствора перекиси водорода перед применением. Срок годности рабочего раствора азопирама 40 минут, лучше рабочий раствор азопирама готовить перед применением.
Рабочий раствор азопирама проверяется на пригодность не реже одного раза в неделю: на предметное стекло с мазком крови капается 2-3 капли рабочего раствора азопирама, если в течение одной минуты появилось сине фиолетовое окрашивание, раствор годен к применению.
Техника проведения пробы.
Лоток выстилается белой салфеткой, на которую выкладывается инструмент. Инструменты должны быть разной конфигурации. Раствор капается на рабочие поверхности, трудно отмываемые части инструмента.
В инструменты, имеющие полости или каналы раствор набирается, а на плоские - капается из пипетки 2-3 капли раствора и сразу засекается время.
Если в течение одной минуты появилось сине-фиолетовое окрашивание реакция на кровь положительная, бурое окрашивание - реакция положительная на хлор и ржавчину, розовое - на моющие средства.
Результаты азопирамовой пробы заносятся в соответствующий журнал.
Журнал учета качества предстерилизационной обработки
Начат «____ »__________ 20__г. Окончен « __ » _____________20__ г.
Результаты выборочного химического контроля обработанных изделии
| Дата | Способ обработки | Применяемое средство | Наменование изделий | Количество штук | Из них загрязненных | Фамилия лица, проводившего контроль
| |
|
|
|
|
|
| кровью | моющими средствами |
|
| 1 | 2 | 3 | 4 | 5 | 6 | 7 | 8 |
В случае положительной пробы на кровь, моющие средства, всю группу контролируемых изделий подвергают повторной предстерилизациооной обработке.
Азопирамовая проба проводится на остатки крови.
Фенолфталеиновая проба
Фенофталеиновая проба проводится на наличие остаточных количеств щелочных компонентов моющих средств в соответствии с действующими методическими документами и инструкциями по применению конкретных средств.
Рабочий раствор - 1 % спиртовый раствор фенолфталеина. В холодильнике хранится один месяц, вне холодильника - 15 дней.
Техника постановки пробы так же, как и азопирамовой пробы.
Если появилось окрашивание в течение одной минуты розовое окрашивание, реакция на моющие средства положительная.
Проба с суданом-III.
Проба ставится только на инструменты, испачканные масляными препаратами.
Рабочий раствор - судан-III. В холодильнике хранится 6 месяцев, вне холодильника ~ 3 месяца.
Техника постановки пробы.
Инструмент протирается салфеткой, смоченной суданом-III. Далее инструмент ополаскивается проточной водой, обильной струей. Если на инструменте появились желтые пятна или подтеки, реакция на масляные препараты положительная. При отрицательных пробах растворы не меняют свою окраску.
При положительных пробах вся партия инструментов проходит повторную предстерилизационную обработку.
Инструменты, использованные для контроля, при положительных и отрицательных пробах подвергаются повторной обработке.
Предстерилизационной обработке придается большое значение, т.к. эффективность стерилизации зависит от чистоты объекта. Наличие загрязнений органического и неорганического характера создают вокруг микроорганизмов защитную оболочку, что резко снижает действенность термической и химической стерилизации.
osypova1267.narod.ru
Проведение предстерилизационной очистки ИМН
Предстерилизационная очистка проводится после дезинфекции и отмывания остатков дезинфицирующих средств проточной питьевой водой. Цель ПСО – удаление белковых, жировых, механических загрязнений и остатков лекарственных препаратов. ПСО должны подвергаться все ИМН перед стерилизацией. ПСО проводят ручным или механизированным способом. Разъемные изделия подвергают ПСО в разобранном виде и полностью погружаются в моющий раствор.
При наличии у средства, наряду с моющими, также и антимикробных свойств ПСО на этапе замачивания может быть совмещена с дезинфекцией.
Методика проведения ПСО:
1. Замачивание ИМН в моющем растворе на 15 минут при температуре 50º С. Приготовление 1 литра моющего раствора: 5 г. порошка («Лотос», «Астра», «Айна», «Прогресс», «Маричка») + перекись водорода (27,5% - 17 мл, 30% - 16 мл, 33% - 14 мл). Моющий раствор можно использовать в течение суток, подогревать до 6 раз, если цвет раствора не изменился. При применении моющего средства «Биолот» для приготовления 1 литра моющего раствора необходимо взять 5 г порошка + 995 мл воды. Этот раствор подогревается до 45ºС, используется однократно.
2. Мойка каждого изделия в том же растворе, в котором проводили замачивание, при помощи ерша, ватно-марлевого тампона или тканевой салфетки, каналов – с помощью шприца в течении 30 секунд. Температура раствора в процессе мойки не поддерживается.
3. Промывание под проточной водой поле моющего средства «Биолот» - 3 минуты, после моющих средств «Прогресс», «Маричка» - 5 минут, после моющих средств «Лотос», «Астра», «Айна» - 10 минут.
4. Ополаскивание дистиллированной водой – 30 секунд (для осаждения солей, содержащихся в водопроводной воде).
5. Сушка на открытых лотках до полного высыхания или горячим воздухом (в сухожаровом шкафу) при температуре 80-85º С до полного исчезновения влаги.
Примечания:
· Все этапы ПСО проводятся в перчатках.
· Ватно-марлевые тампоны для механической очистки менять после каждой обработки.
· Моющий раствор подогревать только к моменту погружения в него инструмента.
· Соблюдать температурный режим моющего раствора (при более низкой температуре БАВ – ферменты выделяются очень медленно, а при более высокой температуре – разрушаются).
Контроль качества предстерилизационной очистки.
Контроль качества предстерилизациоиной очистки изделий медицинского назначения проводит планово Центр Госсанэпиднадзора - ежеквартально и по эпидпоказаниям. Самоконтроль в ЛПУ проводят в ЦСО - ежедневно, в отделениях - не реже 1 раза в неделю старшей медицинской сестрой. Контролю подлежат: в ЦСО – 1% от каждого наименования изделий, обработанных за смену, в отделениях – 1% одновременно обработанных изделий каждого наименования, но не менее 3-5 единиц.
Контроль качества предстерилизационной очистки осуществляют до проведения стерилизации путем постановки проб:
· азопирамовой – универсальная проба, ставится на остатки крови, дезсредств, моющего средства;
· амидопириновой - ставится на остатки крови;
· фенолфталеиновой – ставится на остатки моющего средства.
· проба с Суданом III]- проба на масляные лекарственные загрязнения на изделиях
В случае положительной пробе всю партию контролируемых изделий подвергают повторной очистке. Результаты фиксируются в журналах (Приказ МЗ РФ № 254/91 и МУ-287-113 от 30.12.98 г.)
Азопирамовая проба
Цель: контроль качества предстерилизационной очистки
Показания:
· в централизованной стерилизационной – ежедневно
· самоконтроль на отделении – 1 раз в неделю
· центр санэпиднадзора контролирует ЛПО – 1раз в квартал
Необходимые условия:
· 1% изделий одного наименования, но не менее 3-5 шт.
· исходный раствор азопирама, приготовленный аптекой
· 3% перекись водорода
· марлевая салфетка
· стекла с мазками крови
· журнал учета результатов контроля предстерилизационной очистки
| ПРОЦЕСС | ОБОСНОВАНИЯ |
| 1.Приготовить рабочий раствор азопирама смешивая равные объемы (1:1) исходного раствора азопирама и 3% перекиси водорода, рабочий раствор пригоден к употреблению только в течение 1-2 часов. 2.Проверить активность рабочего раствора, капнув несколько капель на стекло с мазком крови. 3.Холодные изделия (не выше 250C) протереть тампоном, смоченным реактивом или нанести 3-4 капли рабочего раствора пипеткой в шприц и несколько раз подвигать реактив поршнем. 4.Экспозиция 0,5 – 1 минута. 5.Раствор из шприца вытеснить на марлевую салфетку или гладкое изделие протереть марлевой салфеткой. 6.Чтение пробы: · розово-сиреневое окрашивание появляется при наличии на изделиях гемоглобина; · буроватое окрашивание – при наличии окислителей, хлорамина, хлорной извести, стирального порошка, отбеливателей, ржавчины. 7.Независимо от результата пробы изделие промыть водой или спиртом. 8.При положительной пробе вся партия изделий подлежит повторной очистке. 9.Результаты пробы записать в журнал учета. | · контроль пригодности и активности рабочего раствора · при более высокой температуре реактив разрушается · обеспечить проникновение рабочего раствора в места соединения · если изменение цвета позже, чем через одну минуту, проба не засчитывается · оценка результатов · удаление токсических веществ · учет и преемственность |
Амидопириновая проба
Непосредственно перед постановкой пробы смешивают равные объемные количества
· 5% раствора амидопирина;
· 30% раствора уксусной кислоты;
· 3% раствора перекиси водорода.
При постановке амидопириновой пробы о наличии остатков крови свидетельствует сине-зеленое окрашивание реактива не позднее, чем через 1 минуту.
Фенолфталеиновая проба
Для постановки пробы используют 1% спиртовой раствор фенолфталеина. Раствор хранят в холодильнике в течение месяца. При наличии остатков моющего средства на инструментах появляется сине-фиолетовое окрашивание.
Контролю подвергают 1% каждого наименования изделий, обработанных за сутки, а в ЦСО - за 1 смену.
Контрольные вопросы
1. Перечислите этапы ПСО ИМН.
2. С какой целью проводится ПСО ИМН?
3. Какие ИМН подвергаются ПСО и стерилизации??
4. Как проводится контроль качества ПСО ИМН?
5. Как вы понимаете понятия асептика и антисептика?
6. Перечислите виды антисептики.
Тест: Предстерилизационная очистка
Дополните утверждения:
1. Предстерилизационная очистка имеет _________этапов.
2. Моющий раствор со средством «Биолот» используется ____________.
3. Предстерилизационная очистка проводится процедурной медсестрой в ______кабинете.
4. Для приготовления моющего раствора на 1 л берется ______моющего р-ра.
5. Для уборки процедурной использовать уборочный инвентарь, для уборки палат ______.
6. Замачивание шприцев ________ р-ром хлорамина проводят для дезинфекции
7. Для уборки процедурного кабинета использовать уборочный инвентарь для уборки коридора __________.
8. Замачивание шприцев в моющем растворе - это __ этап предстерилизационной очистки.
9. Для VII этапа ПО используется ______________________ вода.
10. Для предстерилизационной очистки используется _____раствор хлорамина.
11. Для контроля качества предстерилизационной очистки используется ___% изделий от всей партии.
12. Генеральная уборка процедурного кабинета проводится 1 раз в __________.
Эталоны ответов на тест
1. 8
2. Однократно
3. Процедурном кабинете
4. 5
5. Запрещено
6. Дезинфекция
7. Запрещено
8. 4
9. Дистиллированная
10. 3
11. 1
12. Неделю
Список использованной литературы:
- Обуховец Т.П. ОСД. Практикум, «Феникс», 2013, с. 99-15
Электронная библиотека колледжа:
- Островская И.В. Широкова Н.В. «Основы Сестринского дела» 2008;
- Мухина С.А., Тарновская И.И. «Теоретические основы сестринского дела» 2010
4. Санитарно-эпидемиологические правила и нормативы СанПиН 2.1.3.2630 – 10.
Не нашли то, что искали? Воспользуйтесь поиском гугл на сайте:
zdamsam.ru
