Дезинфекция, предстерилизационная очистка, стерилизация изделий медицинского назначения. Журнал предстерилизационной обработки инструментов

15.3. 5. Журнал учета качества предстерилизационной обработки

 

Дата	Способ обработки	Применяемое средство	Результаты выборочного химического контроля обработанных изделий						Фамилия лица проводившего контроль
			Наименова­ние изделий	Количество штук	Из них загрязненных
					кровью	Моющими средствами

 

Начат « » 200 г. Окончен « » 200 г.

Форма М 366/у. Утверждено МЗ СССР от 04.10.80 г. № 1030.

 

15.4. Стерилизация

Стерилизацию изделий медицинского назначения проводят с целью умерщвления на них всех патогенных и непатогенных мик­роорганизмов, в том числе их споровых форм.

1. Стерилизацию осуществляют физическими (паровой, воздуш­ный, в среде нагретых шариков) и химическими (применение ра­створов химических средств, газовый) методами, указанными в таб­лицах п.п.15.1-15.3. Выбор адекватного метода стерилизации зависит от особенностей стерилизуемых изделий.

2. При стерилизации паровым, воздушным и газовыми методами изделия, как правило, стерилизуют упакованными в стерилизационные упаковочные материалы; при паровом методе, кроме того, ис­пользуют стерилизационные коробки без фильтров и с фильтрами.

Могут быть использованы только упаковочные материалы, раз­решенные к применению в Российской Федерации.

При воздушном методе, а также в отдельных случаях при паро­вом и газовом методах, допускается стерилизация инструментов в неупакованном виде (в открытых лотках).

 

15.4.1. Паровой метод стерилизации

1. При паровом методе стерилизации стерилизующим средством является водяной насыщенный пар под избыточным давлением, температурой 120-132 градуса С; стерилизацию осуществляют в паровых стерилизаторах (автоклавах).

2. Паровым методом стерилизуют общие хирургические и спе­циальные инструменты, детали приборов и аппаратов из коррозионно-стойких материалов, стекла, шприцы с пометкой 200°С, хирургическое белье, перевязочный и шовный материал, изделия из резины (перчатки, трубки, катетеры, зонды и т. д.), латекса, отдельных видов пластмасс.

3. Резиновые перчатки перед стерилизацией пересыпают внутри и снаружи тальком для предохранения от склеивания. Между перчат­ками прокладывают марлю или бумагу, каждую пару перчаток завора­чивают отдельно в марлю или бумагу и в таком виде помещают в стерилизационную коробку или в другую упаковку. В целях уменьшения неблагоприятного воздействия пара резиновые перчатки, как и другие изделия из резины, стерилизуют при температуре 120-122 градуса С.

 

Стерилизация паровым методом (Водяной насыщенный пар под избыточным давлением)

 

Давление пара в стерилизационной камере		Температура стерилизации			Время стерилизационной выдержки, мин.
Номинальное значение	Предельное отклонение	Номинальное значение	Предельное отклонение	При ручном и полуавтоматическом управлении не менее*		При автоматическом изменении предельного значения + отклонение	Вид изделий рекоменд. к стерилизации данным методом		Вид упаковочного материала
0,020 (2.0)	+0,02 (+0.2)	132	+2	20		20+2	Изделия из коррозионно-стойких металлов, стекла, изделия из текстильн. материалов, резин, лигатурн. шовный материал		Стерилиз. коробка, с фильтром или без, двойная мягкая уп. из бязи. бумага мешочная
0,11 (1,1)	+0,02 (+0,2)	120	+2	45		45+3	Изделия из резин, латекса, отлельн. видов пластмасс		бум. крепир. упаковочн. материалы фирмы Випак-Медикал (Финляндия) Рексам (Великобретания**) или без упаковки

 

studfiles.net

6. Контроль качества предстерилизационной очистки изделий медицинского назначения

6.1. Контроль качества предстерилизационной очистки проводят специалисты территориальных санитарно-эпидемиологических учреждений в зависимости от эпидзначимости медучреждения и конкретной эпидситуации.

Самоконтроль в ЛПУ проводят: в централизованных стерилизационных (ЦС) ежедневно, в отделениях - не реже 1 раза в неделю; организует и контролирует его старшая медицинская сестра (акушерка) отделения, главная медсестра - 1 раз в месяц.

6.2. Контролю подлежит: в ЦС - 1% от каждого наименования изделий, обработанных за смену, в отделениях - 1% одновременно обработанных изделий каждого наименования, но не менее 3-х единиц.

6.3. Качество предстерилизационной очистки изделий оценивают путем постановки азопирамовой пробы (на наличие остаточных количеств крови).

Методика приготовления реактивов для постановки пробы.

6.3.1. Азопирамовая проба.

6.3.1.1. Приготовление исходного раствора. Для приготовления 1 л (дм3) исходно го раствора азопирама отвешивают 100 г амидопирина и 1,0-1,5 г солянокислого анилина, смешивают их в сухой мерной посуде и доводят до объема 1 л (дм ) 95% этиловым спиртом. Смесь тщательно перемешивают до полного растворения ингредиентов.

Исходный раствор азопирама следует хранить в плотно закрытом флаконе в темноте. Допустимый срок хранения исходного раствора азопирама составляет, при температуре 4оС (в холодильнике) - 2 месяца; при комнатной температуре (20±2°С) - не более 1 месяца. Умеренное пожелтение исходного раствора без выпадения осадка в процессе хранения не снижает рабочих свойств раствора.

6.3.1.2. Приготовление реактива азопирам. Перед постановкой пробы готовят ре актив азопирам, смешивая равные объемные количества исходного раствора азопирама и 3% раствора перекиси водорода.

Реактив азопирам можно хранить не более 2 часов. При более длительном стоянии может появиться спонтанное розовое окрашивание реактива. При температуре выше +25°С раствор розовеет быстрее, поэтому его необходимо использовать в течение 30-40 мин. Не следует подвергать проверке горячие инструменты, а также хранить реактив азопирам на ярком свету и вблизи нагревательных приборов.

В случае необходимости пригодность реактива азопирам проверяют следующим образом: 2-3 капли реактива наносят на пятно крови. Если не позже, чем через 1 мин появляется фиолетовое окрашивание, переходящее затем в сиреневый цвет, реактив пригоден к употреблению, если окрашивание в течение 1 мин не появляется, реактивом пользоваться не следует.

Методика постановки пробы.

Контролируемое изделие протирают марлевой салфеткой, смоченной реактивом, или наносят 2-3 капли реактива на изделие с помощью пипетки.

В шприцы вносят 3-4 капли рабочего раствора реактива и несколько раз продвигают поршнем для того, чтобы смочить реактивом внутреннюю поверхность шприца, особенно места соединения стекла с металлом, где чаще всего остается кровь, реактив оставляют в шприце на 1 мин, а затем вытесняют на марлевую салфетку. При проверке качества очистки игл реактив набирают в чистый, не имеющий следов коррозии шприц Последовательно меняя иглы, через них пропускают реактив, вытесняя 3-4 капли на марлевую салфетку.

Качество очистки катетеров и других полых изделий оценивают путем введения реактива внутрь изделия с помощью чистого шприца или пипетки. Реактив оставляют внутри изделия на 1 мин, после чего сливают на марлевую салфетку. Количество реактива, вносимого внутрь изделия, зависит от его величины.

studfiles.net

«ПРЕДСТЕРИЛИЗАЦИОННАЯ ОЧИСТКА ИНСТРУМЕНТОВ. ПРИНЦИПЫ РАБОТЫ ЦЕНТРАЛИЗОВАННОГО СТЕРИЛИЗАЦИОННОГО ОТДЕЛЕНИЯ» — Мегаобучалка

ОБЪЁМ НЕОБХОДИМЫХ ЗНАНИЙ:

· Значимость предстерилизационной очистки инструментария многоразового использования, аппаратуры.

· Способы проведения предстерилизационной обработки.

· Правила приготовления моющего раствора.

· Методы контроля качества предстерилизационной очистки.

· Неполный цикл контроля качества предстерилизационной очистки.

· Устройство и функции ЦСО.

· Преимущества стерилизации в ЦСО: постоянный контроль качества стерилизации, современная аппаратура, механизация предстерилизационной очистки.

· Недостатки при стерилизации вне ЦСО: отсутствие постоянного бактериологического контроля, ручная предстерилизационная очистка.

 

3адание № 1.

Письменно ответьте на вопросы:

Перечислите этапы обработки изделий медицинского назначения:____

Цель предстерилизационной очистки:________

Перечислите этапы предстерилизационной очистки:_____________

 

3адание № 2.

Медицинская сестра, проведя 5 этапов предстерилизационной обработки, 6 этапом, согласно ОСТа, поместила шприцы, инструменты на сетку стерилизатора для сушки.

Сколько времени потребуется для проведения данного этапа? При какой температуре проводится сушка изделий?

_______________

 

3адание № 3.

Заполните пустые графы таблицы«Приготовление 0,5% моющего раствора (1 литр)».

1.	Приготовить: ёмкость 1-2 литра, моющее средство, («Лотос», «Астра», «Айна», «Маричка»), 3% раствор перекиси водорода, воду 1 литр, мерный сосуд, нагревательный прибор, водный термометр, стеклянную бутыль, маску, перчатки, халат.
2.	Вымыть руки, осушить, надеть перчатки, маску, халат.
3.
4.
5.
6.

 

3адание № 4.

Заполните пустые графы таблицы «Приготовление моющего раствора с пергидролем».

пергидроль	27,5% - 17 мл.	30% - 15 мл.
СМС		5 гр.	5 гр.
	978 мл.		981 мл.

 

3адание № 5.

 

Для приготовления моющего раствора у Вас имеется порошок «Биолот».

 

Как приготовить раствор на основе порошка «Биолот»?

Укажите температуру готового раствора.

Как долго можно использовать готовый раствор?

 

__________________

 

 

3адание № 6.

 

Письменно ответьте на вопросы:

 

Какие пробы, используются для контроля качества предстерилизационной очистки?________

 

Сформулируйте цель проведения контроля качества предстерилизационной очистки:________

 

 

3адание № 7.

 

По просьбе студентов медицинского колледжа медсестра ЦСО продемонстрировала последовательность проведения фенолфталеиновой пробы.

 

С какой целью проводится проба?

Укажите последовательность проведения пробы.

______________

3адание № 8.

 

После поэтапной предстерилизационной очистки медицинских изделий, медсестрой проведён контроль качества очистки амидопириновой пробой. Раствор амидопирина, пройдя через канал медицинского инструмента, изменил цвет, приобретя сине-зелёное окрашивание.

 

Как читается результат проведённой пробы?

Опишите последовательность проведения пробы.

__________________

 

 

3адание № 9.

 

Заполните таблицу:

 

Наименование проб.	Приготовление растворов проб.	Результат контроля при положительной пробе.
Азопирамовая проба на кровь, окислители, ржавчину.
Проба с Суданом-3 (проба на жировые остатки).

3адание № 10.

 

Вставьте пропущенные слова и выражения:

 

От полноты и качества проведения предстерилизационной обработки впрямую зависит эффективность последующей стерилизации, поэтому нормативами в практику введен обязательный контроль качества предстерилизационной очистки.

Контролю подвергается _____ от одновременно отработанных изделий одного наименования, но не менее 3-5 единиц.

Качество предстерилизационной очистки контролируют, определяя:- кровь - с помощью____________________________пробы;- масляные лекарственные загрязнения - с помощью пробы_______________________;- остатки моющих средств — с помощью ________________________________пробы.

 

3адание № 11.

Опишите методику постановки проб:

______________________________

 

3адание № 12.

Существует ли группа дезинфицирующих веществ, позволяющих проводить дезинфекцию и предстерилизационную очистку одномоментно?

Если да, то перечислите их:

______________

 

 

3адание № 13.

 

Заполните «Журнал учета качества предстерилизационной обработки» (медицинская документация форма №366/у).

 

ЖУРНАЛ

Дата.	Способ обработки.	Применяемое средство.	Результат выборочного химического контроля обработанных изделий:	Ф.И.О. лица,прово-дившего контроль.
Наименование изделий	Количество штук	Из них загрязненно

УЧЕТА КАЧЕСТВА ПРЕДСТЕРИЛИЗАЦИОННОЙ ОБРАБОТКИ

Начат "___" ____________ 20___ г. Окончен "___" _____________ 199 г.

 

3адание № 14.

Способы предстерилизационной очистки

Заполните схему:

 

R pwHaEOJUFYUDUlRBWzi78ZJEjddR7Kbh71lO9LajeZqdyZajbcWAvW8cKZhNIxBIpTMNVQr2u9fb BIQPmoxuHaGCH/SwzCdXmU6NO9MHDttQCQ4hn2oFdQhdKqUva7TaT12HxN63660OLPtKml6fOdy2 Mo6iubS6If5Q6w6fayyP25NVsC7eNnZ9fPmUxftXgdGQhHFTKHVzPa6eQAQcwz8Mf/W5OuTc6eBO ZLxoFTzc3z0yyka84A1MJHyBOCiIF7MEZJ7Jyw35LwAAAP//AwBQSwECLQAUAAYACAAAACEAtoM4 kv4AAADhAQAAEwAAAAAAAAAAAAAAAAAAAAAAW0NvbnRlbnRfVHlwZXNdLnhtbFBLAQItABQABgAI AAAAIQA4/SH/1gAAAJQBAAALAAAAAAAAAAAAAAAAAC8BAABfcmVscy8ucmVsc1BLAQItABQABgAI AAAAIQCSOxcjiAIAADIFAAAOAAAAAAAAAAAAAAAAAC4CAABkcnMvZTJvRG9jLnhtbFBLAQItABQA BgAIAAAAIQCzYKXN4QAAAAsBAAAPAAAAAAAAAAAAAAAAAOIEAABkcnMvZG93bnJldi54bWxQSwUG AAAAAAQABADzAAAA8AUAAAAA " fillcolor="#399bb6 [2824]" strokecolor="#4bacc6 [3208]">

 

3адание № 15.

Тест-контроль:

 

1. Для приготовления 1л. моющего раствора при предстерилизационной обработке инструментария необходимо взять пергидроль 27,5% (в мл):

а) 33 б) 30 в) 17 г) 14

Ответ_______________

1. Для приготовления 1л. моющего раствора при предстерилизационной обработке инструментария необходимо взять 3% раствор перекиси водорода (в мл):

а) 220 – 240 б) 200 – 210 в) 160 – 180 г) 100 – 120

Ответ_______________

1. После использования резиновые перчатки подвергаются:

а) дезинфекции, предстерилизационной очистке, стерилизации;

б) промыванию под проточной водой, стерилизации;

в) дезинфекции, стерилизации;

г) предстерилизационной очистке, стерилизации.

Ответ_______________

1. Приготовление 1л. моющего раствора для предстерилизационной обработки инструментария:

а) 5г. порошка "Лотос", 160 мл 3% перекиси водорода довести до 1л. водой;

б) 5г. порошка "Лотос" 200 мл 3% перекиси водорода довести до 1л. водой;

в) 5г. порошка "Лотос" довести до 1л. водой;

г) 10г. любого порошка развести в 990 мл.воды.

Ответ_______________

1. Экспозиция при замачивании медицинских инструментов в моющем растворе при предстерилизационной очистке (в мин.):

а) 45 б) 30 в) 15 г) 10

Ответ_______________

1. Приготовление моющего раствора, используемого для ПСО многоразовых шприцев:

а) 15 г. порошка «Биолот» довести водой до 1л.,

б) 10 г. порошка «Биолот» довести водой до 1,5л.,

в) 5 г. порошка «Биолот» довести водой до 1л.,

г) 1,5 г. порошка «Биолот» довести водой до 1л.

Ответ_______________

1. Положительная азопирамовая проба на скрытую кровь дает окрашивание:

а) зеленое;

б) розовое;

в) красное;

г) фиолетовое (сине - фиолетовое).

Ответ_______________

1. При положительной фенолфталеиновой пробе появляется окрашивание:

а) сине-зеленое;

б) фиолетовое;

в) розовое;

г) коричневое.

Ответ_______________

1. После проведения предстерилизационной очистки для промывания мединструментов используется вода:

а) проточная;

б) кипяченая;

в) дистиллированная;

г) дважды дистиллированная.

Ответ_______________

 

1. Фенолфталеиновая проба проводится для определения остатков:

а) масляного раствора;

б) крови;

в) моющего средства;

г) лекарственного средства.

Ответ_______________

1. Моющий раствор с использованием средства "Лотос" применяется:

а) в течение суток до появления фиолетовой окраски, нагревается до 3 раз;

б) в течение суток до появления фиолетовой окраски4

в) в течение суток до появления розовой окраски, нагревается до 6 раз;

г) до появления розовой окраски.

Ответ_______________

1. Универсальная проба для проверки мед.инструментария на наличие скрытой крови называется:

а) бензидиновой;

б) фенолфталеиновой;

в) азопирамовой;

г) бензойной.

Ответ_______________

 

 

 

 

ТЕМА «СТЕРИЛИЗАЦИЯ».

ОБЪЁМ НЕОБХОДИМЫХ ЗНАНИЙ:

· Стерилизация: понятие, методы, режимы.

· Стерилизаторы: паровой, воздушный, газовый.

· Виды упаковок изделий для стерилизации.

· Сроки хранения стерильных изделий.

· Контроль качества стерилизации.

· Документы, регламентирующие способы стерилизации.

 

3адание № 1.

Дайте определения следующим понятиям:

Дезинфекция -_______________

 

Предстерилизационная очистка –_______________

 

Стерилизация –_______________

 

Асептика - _______________

 

Антисептика - _______________

 

3адание № 2.

Выберите правильный ответ:

ЦСО – это:

а) центральное специализированное отделение

б) централизованное стерилизационное отделение

в) централизованное специализированное отделение

г) централизованное стерильное отделение

Ответ_______________

 

3адание № 3.

Обозначьте задачи и функции централизованного стерилизационного отделения:

_________________________

 

3адание №4.

ЦСО должно располагать набором помещений, которые делят его на две изолированные зоны:

Заполните схему:

 

 

 

3адание №5.

В нестерильной зоне ЦСО должны находиться следующие помещения:

· приёмная;

· моечная;

· подготовительная (упаковочная).

Заполните предложенные Вам таблицы:

Приёмная

Функции:	Оборудование:

 

Моечная

Функции:	Оборудование:

 

Упаковочная

Функции:	Оборудование:

 

3адание № 6.

В стерильной зоне ЦСО должны находиться следующие помещения:

· __________________

· __________________

 

Каким оборудованием должны быть обеспечены эти помещения?

· _

· _

Укажите функции каждого из этих помещений:

· _

· _

 

 

3адание № 7.

Перечислите методы стерилизации:

1.____2.____3.____4.____5.____6.____7.____

3адание № 8.

Опишите паровой метод стерилизации, отвечая на следующие вопросы:

Что является стерилизующим агентом при паровом методе стерилизации?__

Где осуществляется стерилизация паровым методом?_

Какие изделия рекомендуют стерилизовать паровым методом?_______

Какие режимы парового метода стерилизации Вы знаете?______________

Назовите упаковки изделий для парового метода и сроки хранения стерильных изделий в них:___________________________

Перечислите индикаторы контроля качества стерилизации для парового метода стерилизации________

 

 

 

3адание № 9.

Охарактеризуйте воздушный метод стерилизации, опираясь на предложенный план ответа:

· Стерилизующий агент при воздушном методе стерилизации.

· Где осуществляется стерилизация?

· Какие изделия рекомендуют стерилизовать этим методом?

· Режимы воздушного метода.

· Упаковки изделий при воздушной стерилизации.

· Сроки хранения стерильных изделий.

· Индикаторы воздушной стерилизации.

_____

 

 

 

3адание № 10.

Перечислите, известные Вам, стерилянты:__________

 

3адание № 11.

Соедините лучший метод стерилизации со стерилизуемыми предметами.

Методы могут быть использованы один или несколько раз, или ни разу.

Стерилизуемый предмет: Лучший метод стерилизации:

1.Операционное поле А - автоклавирование

2.Операционное бельё Б - кипячение

3.Перчатки В – сухожаровая обработка

4.Шприцы Г –химическая обработка

5. Перевязочный материал Д - обжигание

6.Руки хирурга

7.Эндоскопы и оптика

8.Хирургические инструменты

9.Изделия из резины и полимеров

_________________________

 

3адание № 12.

Медсестра процедурного кабинета ответила на вопрос студентке колледжа о правилах хранения стерильного бикса с фильтром, без фильтра, в крафт-пакете.

Назовите сроки хранения стерильных изделий в указанных видах упаковки._______

3адание № 13.

По просьбе врача медицинская сестра собрала в стерильный лоток из сухожарового шкафа только что простерилизованные инструменты, необходимые для осмотра больного.

Как долго можно пользоваться инструментами стерилизованными в открытой ёмкости?_______

 

3адание № 14.

Изделия из резины (перчатки, дренажи, зонды, катетеры), упакованные в крафт-пакеты, медсестра ЦСО поместила для стерилизации в автоклав, установив давление в нём 1,1 атмосферы.

Укажите время и температуру, которую необходимо выдерживать во время стерилизации.

Назовите срок хранения стерильных изделий.

_______________

 

3адание № 15.

Установите последовательность выполнения манипуляции «закладка в бикс операционного белья».

1. Выстлать изнутри простынёй

2. Осуществить закладку

3. Положить контрольное вещество

4. Открыть боковые отверстия

5. Проверить исправность бикса

6. Прикрепить бирку

7. Поставить в автоклав

8. Плотно закрыть крышку

 

megaobuchalka.ru

Дезинфекция, предстерилизационная очистка, стерилизация изделий медицинского назначения

Дезинфекция и стерилизация изделий медицинского назначения проводится для обезвреживания либо уничтожения различных микроорганизмов. Но некоторые руководители лечебных учреждений, стремясь сэкономить, относятся к этим мероприятиям недостаточно ответственно. В результате значительно возрастает риск развития различных инфекционных заболеваний, в том числе и гнойно-септических, как среди больных, так и сотрудников ЛПУ. Поэтому очень важно правильно обеззараживать медицинские изделия.  Качество дезинфекции можно оценить с помощью смывов на определение золотистого стафилококка, синегнойной палочки и бактерий группы кишечной палочки. Контролируют 1 % одновременно обработанных изделий, но не менее трех инструментов. Дезинфекция считается эффективной при отсутствии роста микроорганизмов.

Обработка медицинских инструментов включает в себя дезинфекцию, предстерилизационную очистку и собственно стерилизацию. Общие правила организации указанных процессов установлены «Методическими указаниями по дезинфекции, предстерилизационной очистке и стерилизации изделий медицинского назначения» (МУ-287-113). Их утвердил Департамент Госсанэпиднадзора Минздрава РФ 30.12.1998 г. Кроме того, применяются утвержденные НИИ дезинфектологии Роспотребнадзора методические пособия по применению конкретных дезинфицирующих средств.

Познакомимся сначала с дезинфекцией, которая является достаточно сложной, объемной и универсальной для различных ЛПУ.

Что такое дезинфекция

Этот термин обозначает уничтожение патогенных и условно-патогенных микроорганизмов на всех поверхностях в помещениях, в том числе на полу, стенах, ручках дверей, выключателях, подоконниках, а также на жесткой мебели, поверхностях врачебного оборудования, в воздухе помещений, на посуде, белье, изделиях медицинского назначения и предметах ухода за больными, санитарно-техническом оборудовании, биологических жидкостях. Словом, дезинфекцию должны проходить все инструменты и расходные материалы, которые используются в работе любого ЛПУ.

Задачей дезинфекции является предупреждение или ликвидация накопления, размножения и распространения  возбудителей заболеваний. И в первую очередь, если мы говорим о больницах,  внутрибольничных инфекций. Дезинфекция может быть профилактической и очаговой.

Профилактическая дезинфекция проводится для защиты людей от возможного заражения. В лечебных учреждениях она выполняется в виде текущей ежедневной влажной уборки и генеральной уборки эпидзначимых кабинетов (операционных, перевязочных) один раз в неделю. Очаговая дезинфекция проводится в случае возникновения или подозрения на возникновение инфекционного заболевания.

Препарат для проведения дезинфекции и его концентрация выбираются исходя из конкретного инфекционного заболевания. В зависимости от вида медицинского изделия проводят дезинфекцию высокого (ДВУ), промежуточного (ДПУ) и низкого уровней (ДНУ).

А теперь условно разделим обрабатываемые предметы на несколько видов. «Некритические» контактируют с неповрежденной кожей. «Полукритические» контактируют со слизистыми оболочками или поврежденной кожей. «Критические» проникают в стерильные ткани организма или сосуды, контактируют с кровью или инъекционными растворами.

ДВУ используется для обработки «критических» предметов. При этом методе обработки погибают все микроорганизмы, кроме спор бактерий. Для ДВУ применяют глутаровый альдегид, диоксид хлора, 6 % раствор перекиси водорода и средства на основе надуксусной кислоты. Эти химические средства можно использовать и для стерилизации. Однако при стерилизации данными веществами время обработки значительно увеличивается.

ДПУ используется для обработки «полукритических предметов. При проведении ДПУ погибают вегетативные формы бактерий, в том числе микобактерии, большинство вирусов и грибов. Однако споры бактерий в этих условиях выживают. Мелкие нелипидные вирусы, например энтеровирусы, риновирусы, более устойчивы к бактерицидным средствам. Крупные же липидные вирусы, такие как аденовирусы, вирус гепатита В и ВИЧ, обычно погибают при обработке дезинфектантами промежуточного уровня. К дезинфекционным средствам, используемым для ДПУ, относятся практически все препараты, концентрация которых готовится по режиму уничтожения бактерий и в соответствии с методическими указаниями к каждому используемому препарату.

ДНУ используется для обработки «некритических» и некоторых «полукритических» предметов. Например, для обработки ванн, которые применяют при гидротерапии пациентов с поврежденной кожей. После ДНУ погибают вегетативные формы большинства видов бактерий, вирусы и грибы. Не реагируют на этот метод обработки споры бактерий, микобактерии и мелкие нелипидные вирусы. К средствам ДНУ относятся соединения на основе 70 % и 90 % этилового или изопропилового спирта, хлорсодержащие препараты, некоторые фенолсодержащие средства и йодофоры. Среди дезинфектантов низкого уровня также можно назвать препараты на основе четвертичных аммониевых соединений.

Применяются 4 основных метода дезинфекции:

Механический метод – это проветривание, вентиляция помещений, стирка белья, обработка поверхностей пылесосом, протирание их влажной ветошью.

Физический метод заключается в высокотемпературной обработке Используются кипячение в дистиллированной воде или воде с добавлением натрия двууглекислого (питьевая сода), паровой метод в стерилизаторе (автоклаве), воздушный метод в суховоздушном шкафу. Этот метод надежен, экологически чист и безопасен для персонала.

Химический метод позволяет обрабатывать медицинские предметы различными химическими веществами в жидком, газообразном состоянии. Изделия погружают в дезраствор, налитый в пластмассовые, стеклянные или покрытые эмалью без повреждений емкости. Для проведения такой дезинфекции рекомендуется применять специальные контейнеры, в которых изделия размещаются на перфорированных решетках. Это снижает риск инфицирования и травматизации персонала. Емкости с растворами дезинфицирующих средств должны быть снабжены крышками, иметь надписи с указанием названия средства, его концентрации, срока приготовления и использования.

Биологический метод основан на использовании антагонизма различных видов микроорганизмов. Так, при использовании бактериофагов, то есть вирусов бактерий, уничтожаются стафилококки, синегнойная палочка, брюшнотифозные бактерии и т. д.

К сведению. Бактериофаги узко специфичны. Например, стафилококковый бактериофаг, проникая в микробную клетку стафилококка, уничтожает только ее. Для обработки медицинских изделий их не применяют, но зато их можно достаточно эффективно использовать для лечения людей и для обеззараживания поверхностей, особенно там, где сформировался госпитальный штамм (например, роддома). Также бактериофаги хорошо знакомы работникам предприятий коммунальной сферы. Их используют для обеззараживания сточных вод на полях фильтрации.

Средства химической дезинфекции

Средства химической дезинфекции наиболее часто используется в ЛПУ. Большинство таких средств по химическому составу можно разделить на 7 групп.

В состав галогенсодержащих веществ входят в качестве активного действующего вещества хлор, бром, йод. Препаратами из этой группы являются, в частности, Хлорамин Б, Хлорэффект, гипохлорид натрия, Де-хлор, нейтральный анолит, Сульфохлорантин, Пресепт, хлоргексидин глюконат и т.д. 

В кислородсодержащей группе препаратов действующим веществом является кислород, выделяющийся из перекиси водорода, перекисных соединений, надкислот. Препаратами этой группы являются, например, перекись водорода, Оксидезин, Пероксимед, Окадез, Клиндезин  Окси, Виркон.

Средства на основе катионных поверхностно-активных веществ (ПАВы) представляются весьма перспективными, так как позволют совмещать дезинфекцию и предстерилизационную обработку. ПАВы не вызывают коррозию медицинских инструментов. К препаратам из этой группы относятся АХД 2000 специаль, Аламинол и Аламинол плюс, Бриллиант, Велтолен, Ника-дез, Премьер, Самаровка, Септодор форте, Вегосепт.

Гуанидсодержащие средства созданы на основе сложных органических соединений. Они активны в отношении широкого спектра микроорганизмов. Препаратами этой группы являются Лизоформин специаль, Лизетол АФ (при его использовании металлические инструменты полностью очищаются, причем без коррозии), Пливасепт 5%, хлоргексидин биглюконат (Гибитан), Фогуцид, который на обработанной поверхности образует защитную пленку, действующую от 3 до 7 суток.

В состав альдегидсодержащих средств входят глутаровый или янтарный альдегид. Препараты этой группы обладают выраженным бактерицидным, вирулоцидным, фунгицидным, спороцидным действием. Вместе с тем они отрицательно действуют на макроорганизмы. Часть этих дезсредств может использоваться не только для дезинфекции, но и для стерилизации инструментария, а также для проведения дезинфекции эндоскопического оборудования по  режиму ДВУ. Из этой группы чаще всего используются Гигасепт ФФ, Сайдекс, Лизоформин 3000, Секусепт Форте.

Спирты. Это группа препаратов на основе этанола, пропанола, изопропанола. Такие средства как Бациллол плюс, Деконекс Соларсепт используют для дезинфекции поверхностей и оборудования. 70 % этиловый спирт используется как кожный асептик.

Среди фенолсодержащих препаратов можно рекомендовать Амоцид и Амоцид 2000, которые эффективны для проведения текущей и заключительной дезинфекции в очагах туберкулеза для обеззараживания биоматериала от больных.

Как проводят дезинфекцию

Медицинские изделия погружают в дезраствор сразу же после их использования. При этом дезраствор должен полностью покрывать инструменты не менее 1 см над их поверхностью. Изделия сложной конфигурации дезинфицируют в разобранном виде. Каналы и полости изделий заполняют дезинфицирующим раствором так, чтобы в них не оставалось пузырьков воздуха. Сильно загрязненные инструменты нужно подвергать двукратной обработке.

Хлорсодержащие средства, например, Хлорамин Б, Клорсепт, применяют в основном для дезинфекции изделий медицинского назначения из стекла, пластмассы, резины, коррозионно-стойкого материала или отработанного перевязочного материала и одноразовых инструментов. Очистка с помощью ерша резиновых изделий не допускается!

Для дезинфекции многоразового металлического инструментария рекомендуется использовать препараты, которые не вызывают коррозии. Правда, эти дезсредства стоят дороже. Но экономить не стоит. Ведь стоимость металлических многоразовых инструментов намного выше.

По окончании дезинфекционной выдержки изделия промывают. Оставшиеся загрязнения оттирают с помощью ершей, щеток, салфеток под проточной питьевой водой либо в специальных моющих аппаратах.

Обратите внимание. Поскольку альдегидосодержащие дезсредства достаточно токсичны, при работе с ними персоналу следует соблюдать особые меры предосторожности:

* рабочие растворы из концентратов готовьте в отдельных хорошо вентилируемых помещениях с достаточной кубатурой;

* во время приготовления рабочих растворов и при работе с ними защищайте органы дыхания респираторами, кожу рук перчатками, а глаза очками;

* рабочие растворы должны находиться только в емкостях с плотно закрытыми крышками! Используйте специальные ванночки - стерилизаторы из полиэтилена. Емкость следует открывать только при необходимости, защищая органы дыхания;

* нельзя разводить исходный концентрат теплой и тем более горячей водой. Это усиливает  вредные испарения с поверхности раствора;

* промывка изделий под проточной водой до дезинфекции не допускается. Ведь аэрозоль, образующийся в процессе мытья, может инфицировать персонал, проводящий обработку, а также поверхности помещений. Подчеркнем, однако, что при применении многих альдегидосодержащих дезинфектантов очистка медицинских изделий от загрязнения  все же необходима. Дело в том, что такие дезинфектанты фиксируют белковые загрязнения. Это затрудняет процесс дезинфекции. Поэтому предварительная очистка в данном случае должна проводиться с соблюдением противоэпидемических принципов. Используются специальные емкости. Промывные воды, салфетки, использованные для очистки, обеззараживаются одним из хлорсодержащих дезинфектантов.

 

Практическими вопросами проведения дезинфекции в любом ЛПУ занимаются в основном медицинские сестры. А вот задача администрации медучреждения - обеспечить приобретение эффективных дезпрепаратов, замену их с периодичностью не реже 8-12 месяцев, чтобы предотвратить формирование антибиотикоустойчивых микроорганизмов. На сегодня поставщики предлагают ЛПУ десятки различных дезинфектантов. Реклама у продавцов напористая, сделать правильный выбор не так-то легко.

В письме от 25.01.2006 № 0100/626-06-32 Роспотребнадзор предписал при выборе реагентов для дезинфекции руководствоваться государственным реестром зарегистрированных дезсредств. Найти этот реестр можно, в частности, на информационных ресурсах Роспотребнадзора в сети Интернет.

Перечни некоторых зарегистрированных в нашей стране дезинфицирующих средств доводятся  и специальными письмами Роспотребнадзора. Например, перечень дезсредств, обладающих вирулицидной активностью, отечественного и зарубежного производства приведен в письме Роспотребнадзора от 07.03.2006 № 0100/2490-06-32.

Предстерилизационная обработка

Для инструментария, который соприкасается со слизистыми оболочками и ранами, в том числе операционными, одной дезинфекции недостаточно. Требуется стерилизация. Но перед этим проводят предстерилизационную обработку. Цель — удаление всех мелких частиц, оставшихся после операции, различных белковых загрязнений.

При предстерилизационной обработке используют специально приготовленные растворы, в которые входят вода, перекись водорода и моющие средства «Астра», «Лотос», «Айна», «Прогресс». Можно также применять дезинфектанты, специально предусмотренные для совмещения дезинфекции с предстерилизационной обработкой. Такие препараты очень удобны в работе, позволяют экономить рабочее время персонала, тем самым сокращая затраты ЛПУ. В настоящее время выбор комбинированных препаратов достаточно широк.

При предстерилизационной очистке разъемные медицинские изделия замачиваются в разобранном виде. Все предметы полностью погружаются в раствор с заполнением всех полостей. О качестве же дезинфекции и предстерилизационной подготовки медицинского инструментария судят по результатам биологических и химических анализов.

Важно. Контроль качества предстерилизационной очистки проводят  в ЛПУ ежедневно, под руководством старшей медицинской сестры. Проверке подлежит 1 % изделий от партии, но не менее трех единиц. Качество очистки оценивают путем постановки азопирамовой пробы на наличие остаточных количеств крови, а также путем постановки фенолфталеиновой пробы на наличие остаточных количеств щелочных компонентов моющих средств. При положительной азопирамовой пробе не позднее чем через 1 минуту после нанесения реактива появляется фиолетовое окрашивание, которое вскоре переходит в розово-сиреневое или буроватое.     

При положительной фенолфталеиновой пробе о наличии на изделиях остаточных количеств щелочных компонентов моющего средства свидетельствует появление розового окрашивания реактива. Если пробы на кровь или на остатки щелочных компонентов моющих средств, оказываются положительными, всю партию изделий повторно очищают до получения отрицательных результатов.

Стерилизация

Как мы уже говорили, оборудование и инструменты, которые проникают в стерильные ткани организма или сосуды, контактируя с кровью или инъекционными растворами, относятся к «критическим» предметам. Они должны пройти стерилизацию, чтобы полностью удалились или уничтожились всех виды микроорганизмов, включая споры бактерий. Стерилизация не может быть относительной, она всегда абсолютна! В медицинской практике применяются в основном три вида стерилизации.

Таблица 1. Виды стериализации.

Виды стерилизации	Методы стерилизации	Действующий агент
физический	паровой воздушный гласперленовый инфракрасный	пар под избыточным давлением (120 °С, давление 1,1 атм) (132 °С, давление 2,0 атм)   сухой воздух при 180 °С нагретые стеклянные шарики при 190–240 °С инфракрасное излучение при 200+3 °С
химический	жидкостной плазменный	растворы химических соединений (альдегид-, кислород-, хлорсодержащих) пары 20 % пероксида водорода
газовый	-	окись этилена в смеси с углекислым газом, бромистым метилом и др.

Поясняем. При стерилизации горячим воздухом возбудители болезней уничтожаются высокой температурой 180°С в суховоздушном стерилизаторе. В случае подобной стерилизации в автоклаве эффект достигается уже при 120 °С. Инструменты в него укладывают так, чтобы они не касались друг друга. Для контроля стерилизации используют химические тесты, которые укладывают на каждую полку суховоздушного стерилизатора в виде конверта в 5 точках по четырем краям и в середине. Если хотя бы один химический тест не изменил цвет, стерилизацию всей партии инструментов проводят заново. Обратите внимание, что сроки хранения стерильного материала после этой процедуры незначительные – до 1 суток.

Об успешном проведении стерилизации можно говорить при соблюдении следующих параметров обработки: температурный режим, давление пара, время воздействия (экспозиция).

            Таблица 2. Режимы стерилизации некоторых медицинских инструментов

Способ стерилизации	Температура, °С	Давление, кгс/кв.см	Экспозиция, мин.	Материал обрабатываемых изделий
Сухим горячим воздухом (суховоздушный стерилизатор)	180		60	металл, стекло
Водяным насыщенным паром под избыточным давлением  (автоклав)	132	2,0	20	металл, стекло, текстильные материалы, резина
	120	1,1	45	резина, латекс, отдельные полимерные материалы

Стерилизация горячим паром широко распространена в ежедневной медицинской практике. Ее достоинства – это короткий полный производственный цикл и невысокие температуры. Автоклавная техника а последние годы усовершенствовалась и позволяет при доступном для ЛПУ уровне затрат обеспечивать жесткие требования клинических стандартов.

Одним из основных условий проведения качественной стерилизации является загрузка автоклава в точном соответствии с рекомендациями производителя. Это означает правильное расположение и количество загружаемых предметов. Водяной пар должен свободно циркулировать, а конденсат своевременно выводиться. При загрузке автоклава обратите внимание на то, чтобы тяжелые инструменты располагались на нижних поддонах, а легкие - на верхних.

Изделия загружают в таком количестве, которое допускает свободную подачу воздуха к стерилизуемым изделиям. Не допускается перекрывать продувочные окна и решетки вентиляции. Загрузку и выгрузку изделий проводят при температуре не выше 40-50°С.

Для контроля стерилизации в каждый бикс закладывают специальные термоиндикаторы. Они должны располагаться на трех разных уровнях - нижнем, среднем, верхнем - и позволяют осуществлять как внешний (в камере стерилизатора) и внутренний (в упаковке с изделиями) контроль. После окончания стерилизации и обязательно до использования стерильного материала проверяют тесты. Они должны изменить цвет. Если хотя бы одна полоска не изменила цвет, весь материал повторно стерилизуют.

Срок хранения простерилизованных изделий: в биксах без фильтра, в двойной мягкой упаковке – 3 суток; в пергаменте, бумаге мешочной непропитанной, мешочной влагопрочной, бумаге упаковочной высокопрочной, бумаге крепированной, стерилизационной коробке с фильтром – 20 суток.

Виды стерилизаторов. Плюсы и минусы

Существуют стерилизаторы, в которых используется метод, основанный на применении кратковременного импульсного инфракрасного излучения, создающего в рабочей камере температуру 200+3°С. Время инфракрасной стерилизации инструментария в неупакованном виде составляет от 10 до 25 минут, включая этапы выхода на режим и охлаждения. Однако недостатками такой стерилизации являются отсутствие упаковки инструментов, повреждающее воздействие на полимерные материалы и резину, наконец, отсутствие контролирующих индикаторов.

В настоящее время появляется различная аппаратура для стерилизации мелких инструментов. В качестве примера можно привести гласперленовый стерилизатор. Он представляет собой камеру, наполненную стеклянными шариками, которые нагреваются до температуры 190-240°С. Такой метод стерилизации используется в стоматологии. Однако и он имеет недостатки: можно применять лишь для мелких цельнометаллических инструментов без упаковки. Они стерилизуются в течение 5-15 секунд. У более крупных инструментов для такой обработки доступна только рабочая часть. А полная их стерилизация даже при увеличении экспозиции не удается. Проблемы возникают и со средствами контроля работы этих стерилизаторов.

Недостатком стерилизации жидкими химическими средствами является возможное наличие на очищенном инструментарии следов очистки — остатков токсичных бактерицидных средств. Кроме этого необходимо наличие стерильных емкостей, причем не менее двух, со стерильной дистиллированной водой для отмывания стерилизующего агента. При химической стерилизации может наступать загрязнение микроорганизмами простерилизованных инструментов. 

Стерилизация газовым методом более надежна, но технически она весьма сложна. Для нее необходимы особые помещения, аппаратура, согласование с органами санитарного надзора. Тем не менее иногда этому методу нет альтернативы. Ведь не всякая медицинская техника выдержит температурную и жидкостную стерилизацию. К примеру, оптические инструменты, электрооборудование. Но стерилизация газовым методом с применением окиси этилена и формальдегида в России широко не применяется, так как пока разработки отечественной аппаратуры находятся на начальной стадии. В некоторых ЛПУ используют зарубежные газовые стерилизаторы. Заметим, что это оборудование достаточно дорогое. Плюсом стерилизации газовым методом является возможность использования упаковки материалов, которые могут храниться годами. Минусом, помимо его дороговизны, считается существенное время экспозиции (несколько часов), необходимость дегазации при помощи специальной аппаратуры, что дополнительно увеличивает длительность цикла стерилизации.

Существует современный, эффективный, но весьма дорогой метод стерилизации – плазменная очистка в низкотемпературных плазменных стерилизаторах SPS. Принцип работы этой аппаратуры основан на генерации плазмы непосредственно вокруг стерилизуемого материала. Стерилизующим агентом является 20 %-ный пероксид водорода. Процесс происходит в любой части камеры. Контроль температуры осуществляется инфракрасными датчиками. Стерилизация в этом случае представляет собой сухой процесс при температуре от +35 до +50 °С, что гарантирует сохранность инструментов и оборудования, чувствительного к повышенной температуре и влажности. Время стерилизации — от 90 до 120 минут.

Особенности очистки отдельных видов инструментов

Выше мы отнесли к «полукритическим» предметы, контактирующие со слизистыми оболочками или поврежденной кожей, например, ингаляторы и некоторые виды эндоскопов. «Полукритические» инструменты должны подвергаться ДВУ. Но некоторые эндоскопические инструменты относятся к «критическим» и подлежат стерилизации.

Обработка эндоскопов производится непосредственно после их использования и имеет свои особенности, отраженные в табл. 3.

Таблица 3. Порядок очистки эндоскопов

Эндоскопы, используемые для нестерильных эндоскопических манипуляций (гастрофиброскопия, бронхоскопия)	Эндоскопы, используемые для стерильных эндоскопических манипуляциях
1) предварительная очистка 2) окончательная очистка по методике предстерилизационной очистки 3) ДВУ спороцидными средствами	1) предварительная очистка 2) предстерилизационная очистка 3) стерилизация

Особенности очистки, дезинфекции, стерилизации эндоскопов и инструментов к ним содержатся в Методических указаниях МУ 3.5.1937-04, утвержденных Главным государственным санитарным врачом РФ 04.03.2004.

Особые хлопоты ЛПУ доставляет стерилизация термолабильных инструментов. К ним, в частности, относятся лапароскопы. Стерилизация газом окиси этилена или жидкими химическими средствами требует наличие специальной дорогостоящей техники (газовый метод), а также продолжительного времени. Поэтому чтобы не испортить инструмент, во многих стационарах используют дезинфекцию высокого уровня. Однако в отличие от стерилизации ДВУ не уничтожает полностью споры бактерий. Поэтому увеличивается риск инфицирования пациентов. И напомним, что эти изделия после очистки надо хранить в условиях, исключающих вторичное заражение микроорганизмами.

В заключение хочется подчеркнуть, что последовательное и четкое проведение в лечебных учреждениях всех мероприятий по проведению дезинфекции и стерилизации позволит значительно снизить уровень внутрибольничного инфицирования.  

Г.А. КУШНАРЕВА, госпитальный эпидемиолог

www.profiz.ru

---

Смотрите также

• 
  Вебинар по электронному журналу
• 
  Технологии живых систем журнал
• 
  Отечественные записки журнал кратко
• 
  Профессиональное образование столица журнал
• 
  Журнал аккредитация в образовании
• 
  Вязание крючком сабрина журнал
• 
  Тайны звезд журнал ретро
• 
  Журнал учета военных билетов
• 
  Журнал осмотра кабельных линий
• 
  Электронный журнал елизаветинская 76
• 
  Электронный журнал тугулымская школа